Desarrollo de preformulados a base de Nomuraea rileyi para el control de Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Noctuidae)

Abstract

Nomuraea rileyi es el microorganismo que más frecuentemente se encuentra causando epizootias naturales en campo en larvas de Spodoptera frugiperda en diferentes zonas productoras de maíz en Colombia; sin embargo, en el mercado nacional no existe ningún producto registrado a base de este hongo. Por lo tanto, los objetivos del presente trabajo fueron los de desarrollar un método de producción masiva y desarrollar prototipos de bioplaguicida con una cepa del hongo N. rileyi seleccionada por su actividad para el control del gusano cogollero del maíz. Inicialmente se estandarizó un sistema de producción masiva de conidios, para lo cual se evaluaron matrices sólidas como arroz, salvado de trigo y granos de millo, contenidas tanto en bolsas de polietileno de alta densidad, como en bandejas de aluminio y suplementadas con fuentes de nitrógeno orgánico e inoculadas con diferentes tipos de inóculo. Una vez seleccionado el medio en el que se obtuvo el mayor rendimiento de conidios por gramo de sustrato, los conidios fueron separados y utilizados como principio activo para la elaboración de prototipos de bioplaguicida. En el sistema de producción masiva en bolsas, la mayor esporulación se produjo cuando se utilizaron granos de millo, inoculados con fragmentos de medio de cultivo crecido y esporulado de ocho días de edad, siendo ésta de 30 x 108 conídíos.q'. Se desarrollaron dos sistemas de entrega para el bioplaguicida, un concentrado emulsionable con una concentración de 1x1011 conidios.g' y un polvo mojable con una concentración de 1X109 contdíos.g'. con germinaciones del 92 y 87%, respectivamente. Los sistemas de producción masiva resultaron eficientes y económicos para la obtención de conidios y los preformulados representan una alternativa promisoria para el control del gusano cogollero del maíz.

High virulence of a naturally occurring entomopathogenic fungal isolate, Metarhizium (Nomuraea) rileyi, against Spodoptera frugiperda

“…Recently, N. rileyi has been re‐described and changed to M. rileyi according to the molecular characterization by Kepler et al (2014). Natural infection of M. rileyi in the FAW has been reported in several countries (Shylesha et al, 2018; Villamizar et al, 2004). Previous studies reported that M. rileyi isolates were highly virulent to FAW in laboratory conditions (Bosa et al, 2004; Tigano‐Milani et al, 1995).…”

“…Recently, N. rileyi has been re-described and changed to M. rileyi according to the molecular characterization by Kepler et al (2014). Natural infection of M. rileyi in the FAW has been reported in several countries (Shylesha et al, 2018;Villamizar et al, 2004).…”

Performance of Metarhizium rileyi Nm017: nutritional supplementation to improve production and quality conidia

“…All nutritional supplementation proposed herein shorted the culture time of Nm017 to 7 days, traditionally ranging from 10 to 15 days (Devi et al 2001 ; Villamizar et al 2004 ; Caro et al 2005 ; Méndez et al 2010 ; Thakre et al 2011 ; Bich et al 2018 ). During the drying process, the loss of surface water over time caused the volume reduction of the fermentation solid matrix and, probably, the aerial conidia, which made the conidia dustier and less linked to the substrate.…”

“…Values achieved with both media, T2 and T6, were higher than those observed with other commercial entomopathogenic fungus, e . g. , M. rileyi strains growth on a medium rich in soybeans (1.5 × 10 9 conidia g −1 substrate; Caro et al 2005 ), wheat bran enriched with malt soda (3.0 × 10 9 conidia g −1 substrate; Villamizar et al 2004 ), and crushed sorghum (1.4 × 10 9 conidia g −1 substrate; Devi et al 2001 ). Also, Nm017 production presented appropriate biomass yields for commercial entomopathogenic species, like M. anisopliae (27–42.2 g kg −1 ) and B. bassiana (20–40 g kg −1 ) (Keppanan et al 2018 ; Tumuhaise et al 2018 ; Liu et al 2015 ; Pham et al 2010 ; Posada-Flórez 2008 ; Renuka et al 2015 ).…”

“…For solid-state fermentation, rice (high proportion of starch and amylase) is the most suitable substrate for quicker and better mass multiplication of M. rileyi (Thakre et al 2011 ). Currently, M. rileyi conidia production systems are time-consuming (10 to 15 days) and conidial yields are unstable at times (2.2 × 10 6 to 8.4 × 10 9 conidia g −1 substrate) (Devi et al 2001 ; Villamizar et al 2004 ; Caro et al 2005 ; Méndez et al 2010 ; Thakre et al 2011 ; Bich et al 2018 ). Therefore, mass production of M. rileyi conidia is not sufficient to successfully incorporate it as a biological control agent in pest management.…”