A new method for in vitro propagation of lilac (Syringa vulgaris L.): regrowth and storage conditions for axillary buds encapsulated in alginate beads, development of a pre-acclimatisation stage

An improved encapsulation protocol for regrowth and conservation of four ornamental species

“…Encapsulated Syringa vulgaris axillary buds showed a good regrowth (75%) after 50 days in darkness at 5°C [47], while Nerium oleander and P. × fraseri beads stored in the dark at 4°C resulted in 75% and 91% germination, respectively, after 2 or 3 months [6]. Also for Gysophila paniculata, 4°C was the ideal temperature to obtained conversion of encapsulated shoot tips after 90 days of storage [48].…”

Multiplication in vitro de Syringa vulgaris ‘Katherine Havemeyer’ et ‘Charles Joly’

“…Cependant, la multiplication par bouturage conventionnel comporte des difficultés d'enracinement (Hartmann et al 1997), ce qui en limite la disponibilité sur le marché, justifiant le recours à la micropropagation pour obtenir de grandes quantités de matériel végétal. Cependant, même si cette technique permet la production de plantules de lilas de qualité (Lima et Ticknor 1986), elle doit être adaptée selon les cultivars (Hildebrandt 1986, Lima et Ticknor 1986 et mise au point à l'échelle commerciale (Refouvelet et al 1998) pour en assurer la rentabilité. La mise en culture d'explants, effectuée pendant toute l'année, requiert un approvisionnement constant de pieds-mères.…”

“…Pour le cytokinines, la 2iP a varié de 0,5 à 3,0 mg L -1 , la BAP de 0,1 à 3,0, le TZD 2 mg L -1 et la zéatine de 0,1 à 1,0 mg L -1 . Le choix du type d'explant ne fait pas l'unanimité : des sections de tige avec noeuds (Einset et Alexander III 1985;Welander 1987; Pierick et al 1988), des sections de tiges avec apex (Pierick et al 1988) et des bourgeons axillaires (Hildebrandt et Harney 1983;Gabryszewska 1989; Waldenmair et Bünemann 1991;Refouvelet et al 1998) ont été utilisés. Il apparaît donc évident que les conditions optimales de la phase de multiplication ne font pas de consensus parmi les chercheurs et doivent être testées pour chacun des cultivars.…”

“…De plus, les plants maintenus à l'extérieur ont tendance à être plus difficile à aseptiser à la fin de la saison de croissance qu'au début de celle-ci (Brassard, communication personnelle). Les problèmes de contamination mentionnés dans la littérature sur le lilas permettent de supposer de l'inadéquation des techniques d'aseptisation des explants, surtout que la description de ces techniques est souvent incomplète (Hildebrandt 1986) ou omise (Waldenmaier et Bünemann 1991;Refouvelet et al 1998) et que leur efficacité est rarement discutée. Les récents travaux de Al-Khalifah (2000) ont toutefois rapporté l'excellent potentiel de désinfection du virucide Virkon MC sur le palmier.…”

“…Lors de l'étape de multiplication, Pierick et al (1988) ont utilisé 1,5 fois la concentration normale en macro sels du milieu de MS (Murashige et Skoog 1962) pour la production de différents cultivars de lilas alors que Refouvelet et al (1998) recommandent la moitié de la concentration normale pour le cultivar Katherine Havemeyer. Dans les recherches antérieures sur la culture in vitro du lilas, les concentrations hormonales d'auxines et de cytokinines ont été très variables d'un auteur à l'autre (Hildebrandt et Harney 1983;Einset et Alexander 1985;Hilderbrandt 1986;Welander 1987;Pierik et al 1988).…”