Absence of the LiTat 1.3 (CATT antigen) gene in Trypanosoma brucei gambiense stocks from Cameroon

Dukes, Peter P.; Gibson, Wendy; Gashumba, J.K.; Hudson, K.M.; Bromidge, Teresa; Kaukus, A.; Asonganyi, Tazoacha; Magnus, E

doi:10.1016/0001-706x(92)90054-2

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“…Indeed, other groups have developed PCR tests based on T. b. gambiense VSG sequences (AnTat 11.17 and LiTat 1.3), but observed that some T. b. gambiense strains from northwestern Uganda and Cameroon remained negative in these PCRs due to the absence of the corresponding VSG genes within their genome. 40,[58][59][60] Although the TgsGP gene is located on a telomere, it does not belong to a VSG expression site (ES), and as such is not subjected to ES-associated antigenic variation. 43,60 Therefore, the TgsGP-PCR may prove to be a more reliable tool in the detection of T. b. gambiense, e.g., for studying its animal reservoir and its transmission dynamics.…”

Section: Discussionmentioning

confidence: 99%

Novel primer sequences for polymerase chain reaction-based detection of Trypanosoma brucei gambiense.

Radwanska¹,

Claes²,

Magez³

et al. 2002

The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene

146

143

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Abstract. Progress in diagnosis, treatment, and epidemiology of human African trypanosomiasis (sleeping sickness) depends on the existence of specific and sensitive diagnostic tools. Inherent shortcomings of serologic and parasitologic diagnostic methods can be overcome by molecular techniques. Therefore, we have developed a new polymerase chain reaction (PCR) test using primers derived from the recently identified sequence of the Trypanosoma brucei gambiensespecific glycoprotein (TgsGP). The specificity of the TgsGP-PCR was evaluated on DNA extracted from 73 different trypanosome populations belonging to diverse taxonomic groups that were isolated from various host species, and from different geographic origins. The TgsG-PCR was shown to be specific for T. b. gambiense and was suitable for detection of trypanosome DNA in blood samples of patients with confirmed sleeping sickness.

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Section: Discussionmentioning

confidence: 99%

Novel primer sequences for polymerase chain reaction-based detection of Trypanosoma brucei gambiense.

Radwanska¹,

Claes²,

Magez³

et al. 2002

The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene

146

143

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“…24 Indeed, the use of the AnTat 11.17 and LiTat 1.3 (CATT antigen) VSG sequences in identifying T. b. gambiense showed that these genes and their products, although present in most strains, may be missing in some isolates from northwestern Uganda and Cameroon. 25,26 Since the SRA gene resembles VSG genes and the extent of genetic evolution of this gene is currently unknown, one cannot exclude the existence of SRA gene-deficient T. b. rhodesiense parasites or the existence of parasites with a modified SRA gene. Only two SRA genes have been characterized that differ from each other by a few point mutations.…”

Section: Discussionmentioning

confidence: 99%

The serum resistance-associated gene as a diagnostic tool for the detection of Trypanosoma brucei rhodesiense.

Radwanska

Chamekh²,

Vanhamme³

et al. 2002

Am J Trop Med Hyg

143

130

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Abstract. In the search for new diagnostic methods that would distinguish Trypanosoma brucei rhodesiense from T. b. brucei and T. b. gambiense, we have developed two polymerase chain reaction (PCR) primer sets. The first primer set was derived from the serum resistance−associated (SRA) gene of T. b. rhodesiense that confers resistance to lysis by normal human serum (NHS). The specificity of the SRA-based PCR was tested on 97 different trypanosome populations originating from various taxonomic groups, host species, and geographic regions. Only one of 25 T. b. rhodesiense samples was negative in this PCR, and none of 72 other samples were positive in this assay. Interestingly, a reference T. brucei strain (TREU927/4) currently used for genome sequencing was negative for the SRA gene; however, this strain was resistant to lysis by NHS. The second primer set was derived from a specific variant surface glycoprotein (VSG) expression site where the SRA gene is expressed (R-ES). This primer set identified the strain as T. b. rhodesiense in 17 of 17 SRA gene-positive strains in which it was tested. These data strongly suggest that expression of the SRA gene is generally involved in resistance to lysis by NHS in T. b. rhodesiense strains.

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“…Chaque méthode de diagnostic est évaluée en fonction de sa sensibilité (vrais positifs/vrais positifs + faux négatifs) et de sa spécificité (vrais négatifs/vrais négatifs + faux positifs) [12]. Les techniques actuellement utilisées manquent souvent de sensibilité et/ou de spécificité : défaut de sensibilité des examens parasitologiques du fait de parasitémies faibles [13]; défaut de sensibilité des méthodes indirectes dans le cas d'infections précoces (les anticorps ou antigènes recherchés ne circulent pas encore dans le sang) ou d'infections ne produisant pas les anticorps ou antigènes recherchés [14]; défaut de spé-cificité des méthodes sérologiques souvent attribué à des réac-tions croisées avec d'autres trypanosomes ou d'autres parasites humains, à la persistance d'anticorps ou d'antigènes durant plusieurs mois, voire plusieurs années après traitement [15].…”

Section: Améliorer Le Diagnostic Et La Détermination Du Stade De La Munclassified

Apports et limites du diagnostic de la trypanosomiase humaine africaine

et al. 2004

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La trypanosomiase humaine africaine (THA) -ou maladie du sommeil -reste un problème majeur de santé publique en Afrique intertropicale. La prévalence, très souvent sous-estimée en raison de la faible proportion de population à risque sous surveillance, oscillerait entre 300 000 et 500 000 [1]. Cette parasitose, transmise par les glossines ou mouches tsé-tsé, est causée par des protozoaires du genre Trypanosoma : Trypanosoma brucei gambiense (Tb gambiense), responsable d'une forme chronique (forme gambienne) de la maladie en Afrique de l'Ouest et Centrale, et Tb rhodesiense, responsable d'une forme plus aiguë en Afrique de l'Est (forme rhodésienne).Dans le cas de la forme gambienne, le cycle de transmission hommemouche-homme semble prédominer. L'existence d'un réservoir animal a été mise en évidence [2]. Son importance épidémiolo-gique dans la transmission et la persistance de la maladie est toutefois encore mal connue. La forme rhodésienne est une zoonose typique. La transmission à l'homme (souvent considéré comme hôte accidentel) se fait suivant le cycle animal sauvage ou domestique-mouche-homme. Cette différence entre les deux formes de la maladie conditionne les stratégies de lutte : dans la forme gambienne, le traitement de tous les malades, associé à une lutte antivectorielle, devrait théoriquement permettre une éradication de la maladie. Cependant le traitement de tous les malades nécessite un dépistage exhaustif. La THA évolue en deux phases, une première période, lymphatico-sanguine, durant laquelle le parasite se multiplie dans le sang et dans la lymphe, et une deuxième période, méningo-encéphalitique qui correspond au passage du parasite dans le liquide céphalo-rachidien (LCR). Au cours de la première période (qui peut durer plusieurs années dans la forme gambienne,

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Absence of the LiTat 1.3 (CATT antigen) gene in Trypanosoma brucei gambiense stocks from Cameroon

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Novel primer sequences for polymerase chain reaction-based detection of Trypanosoma brucei gambiense.

Novel primer sequences for polymerase chain reaction-based detection of Trypanosoma brucei gambiense.

The serum resistance-associated gene as a diagnostic tool for the detection of Trypanosoma brucei rhodesiense.

Apports et limites du diagnostic de la trypanosomiase humaine africaine

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