Aspectos celulares e moleculares da ranavirose experimental em tilápias do Nilo (<i>Oreochromis niloticus</i>)

Abstract

AGRADECIMENTOSPrimeiramente a Deus, pela conquista, força e dedicação na trajetória.Ao Prof. Dr. Ricardo Luiz Moro de Sousa, pela oportunidade, orientação, confiança, amizade, paciência e exemplo profissional. Será sempre meu maior Professor! A minha noiva Rafaela Torrezan Privatti, pela companhia e ajuda nos cuidados dos animais, inclusive aos finais de semana e feriados, e também pelo apoio nos momentos difíceis. Ao Prof. Dr. Antonio Augusto Mendes Maia, pelo apoio junto ao projeto, confiança, amizade e exemplo profissional. Ao Mateus Maldonado Carriero, pela ajuda na realização da PCR quantitativa em tempo real e pela amizade. Ao Jose Luis Privatti, meu sogro, pela ajuda no transporte dos animais e dos tanques, e pela amizade de sempre. Aos meus pais Celso Candido e Vera Lucia Vitoreli Candido, pelo apoio e carinho. Ao meu irmão Wilson Candido, pelo apoio e carinho. A Dra. Sabrina Ribeiro de Almeida Queiroz, pelo conhecimento transmitido e amizade de longa data. A Dra. Cláudia Maris Ferreira Mostério, pela parceria na realização do sequenciamento completo e pela amizade. Ao financiamento fornecido pela FAPESP, o qual possibilitou minha dedicação exclusiva a pesquisa, a escrita desta tese e artigos -Processo número 2017/01718-3. Ao César Polettini, sócio proprietário da Piscicultura Polettini, pelo fornecimento dos animais sem custo algum, há tempos apoiando a pesquisa cientifica. Ao pessoal do CEPTA, pelo empréstimo dos tanques e apoio junto a pesquisa. A Danielle Passarelli, pela ajuda nos exames sanguíneos e pela amizade. A Dra. María J. Forzán da Universidade de Cornell, pela parceria junto as análises imunohistoquímicas e de hibridização in situ, pela disponibilidade de orientação e amizade. Ao Johnny Maciel de Souza, pela valiosa ajuda junto as análises estatísticas e amizade. Aos amigos do Instituto Biológico, Dra. Ana Maria Cristina Rebello Pinto da Fonseca Martins e Dr. Marcio Hipolito, pelo apoio na realização dos exames histopatológicos. Aos amigos da Unicamp, Joice Ruggeri e Mariana R. Pontes, pelas prosas junto aos longos dias de qPCR.A Pamela Rodrigues, que tive o prazer de orientar em sua primeira iniciação científica, junto a este projeto, meu muito obrigado pela oportunidade e pela sua amizade.

Imunobiológicos para o diagnóstico laboratorial de ranavirose: clonagem e expressão do gene MCP de isolado brasileiro de >i<Ranavirus>/i< e produção de anticorpos policlonais anti-proteína MCP recombinante

“…Outrossim, vale destacar que este mesmo isolado, FV3-símile da sexta passagem, foi utilizado em outros dois trabalhos de infecção experimental. Em um deles, também em tilápias do Nilo (larvas e juvenis), avaliaram-se três diferentes modelos de infecção, sendo que o autor identificou poucos sinais clínicos, algumas alterações hematológicas e histológicas e positividade apenas para algumas larvas, somente ao qPCR, nas concentrações mais elevadas dos tratamentos realizados (10 3 e 10 4 TCID50/mL); portanto, os animais aparentemente não apresentaram problemas com a infecção e neutralizaram o vírus inoculado (CANDIDO, 2018). Em outro trabalho, realizou-se infecção experimental em rãs-touro (girinos e adultos) para avaliar a susceptibilidade desses animais frente ao FV3-símile em três dosagens (1,9 x 10¹ p.f.u./0,05mL; 1,9x 10 3 p.f.u/0,05mL e 3,1 x 10 5 p.f.u/0,05mL); entretanto, os sinais clínicos identificados foram genéricos e nenhum animal veio a óbito (de ambos os grupos, nas três doses); através de PCR e qPCR constatou-se que apenas dois girinos e uma rã adulta foram positivos para o vírus.…”