Brachyspira hyodysenteriae: detection, identification and antibiotic susceptibility

Abstract

101 samples of faeces, colonic mucosa and rectal swabs taken from 100 pigs (29 commercial herds) were cultivated on Trypticase Soy Agar with 5% of sheep blood, spectinomycin (200 mg/l), vancomycin (50 mg/l), rifampicin (12.5 mg/l) and colistin (12.5 mg/l). Plates were incubated in an anaerobic container at 37°C for 5–7 days. 25 samples (10 faeces, 15 scrapings of colonic mucosa) were examined by darkfield microscopy for the presence of spirochaetes. In 80 samples (21 faeces, 31 rectal swabs, 28 scrapings of colonic mucosa) from diarrhoeic pigs 44 isolates of spirochaetes were identified by PCR method as Brachyspira hyodysenteriae. In 21 samples (20 rectal swabs, 1 scraping of colonic mucosa) taken from apparently healthy pigs in herds with swine dysentery were isolated weakly haemolytic spirochaetes: B. intermedia in 5 samples and phenotypic group III brachyspirae in 4 samples. Minimal inhibitory concentration (MIC) of tylosin, tiamulin and valnemulin was determined by the agar dilution method. To tylosin 16 out of 17 strains of B. hyodysenteriae were resistant (MIC 64 and 256 µg/l), one strain was susceptible (MIC l µg/ml). To tiamulin 17 out of 19 strains were susceptible (MIC from 0.016 to 0.25 µg/ml), one strain was intermediately susceptible (MIC 2 µg/ml) and one resistant (MIC 32 µg/ml). To valnemulin 17 out of 19 strains were susceptible (MIC from 0.016 to 0.064 µg/ml), one strain was intermediately susceptible (MIC2µg/ml) and one was resistant (MIC 8 µg/ml). Valnemulin resistant strain was also resistant to tiamulin.

Occurrence of Brachyspira hyodysenteriae in multiplier pig herds in Switzerland

“…The sampled pig population included weaners, growers and replacement gilts of up to 70 kg of bodyweight. This age (weight) group is considered to be at the highest risk to test positive for B. hyodysenteriae (20,34). Sample size was calculated individually for every herd using WinEpiscope 2.0 with an expected prevalence of 8% (CI 95%, population size: risk group).…”

Bacterial Intestinal Infections of Swine

“…Потрапивши у тонкий кишечник і приєднавшись до епітеліальних клітин порожньої кишки CpC, швидко розмножується -до 10 8 -10 9 колонієутворюючих одиниць (КУО)/г вмістимого кишечника лише за декілька годин (Arbuckle,1972;Walker et al, 1980;Ohnuna et al, 1992), виділяючи велику кількість токсинів, які викликають обширний некроз ворсинчастої поверхні з крововиливами. Некротична зона просувається далі, охоплюючи крипти, слизову та підслизову оболонку і м'язові шари.…”

“…Діагностика CpC інфекції грунтується на клінічних ознаках, типових патологічних ураженнях та виявлення CpC у фекаліях або кишковому вмісті (Songer & Uzal, 2005). Останнє, зазвичай, проводять мікробіологічно (Ohnuna et al, 1992;Gubash & Ingham, 1997) та токсинотипуванням ізолятів C. perfringens за допомогою ПЛР (Møller & Ahrens, 1996;Meer & Songer, 1997;Songer & Uzal, 2005).…”

“…Дизентерія свиней (Dysenteria suum) -важка мукогеморагічна ентероінфекція свиней, яке сильно впливає на процес вирощування свиней і несе значні збитки виробникам, спричинені смертністю тварин, зменшенням їх приростів та збільшенням конверсії корму (Wills, 2000;Novotná & Škardová, 2002;Hampson et al, 2006). Дизентерія зазвичай виникає у свиней з живою масою 15-70 кг, але захворювання може зустрічатися і у дорослих свиней, а іноді і у підсисних поросят (Harris et al, 1999).…”

Investigação de Brachyspira hyodysenteriae e Brachyspira pilosicoli em suínos com diarreia no estado do Espírito Santo

“…;WEISSENBÖCK, 2005;NOVOTNÁ, SKARDOVÁ, 2002). Porém, as condutas terapêuticas e/ou preventivas contra os agentes das enterites são muitas vezes diferentes, demonstrando, consequentemente, a importância do diagnóstico correto para que sejam adotadas as medidas mais adequadas(GUEDES, 2010).…”