Eficiencia de la biodegradación de hidrocarburos de petróleo por hongos filamentosos aislados de suelo contaminado

Abstract

<p>La biodegradación disminuye el impacto ambiental negativo de los derrames de hidrocarburos de petróleo. El objetivo de esta investigación fue determinar la eficiencia de biodegradación de hidrocarburos de petróleo de diez cultivos de hongos filamentosos hidrocarbonoclásticos seleccionados. Las muestras de suelo contaminado con hidrocarburos de petróleo presentaron concentración de hidrocarburos totales (HTP) (25 987 mg kg-1), microorganismos totales (>1,1 x 107 NMP g-1) microorganismos hidrocarbonoclásticos (1,1 x 106 NMP g-1) y un<br />nivel de toxicidad severo en el índice de germinación de Raphanus sativus L. “rabanito”. Los hongos filamentosos se aislaron en agar Bushnell Haas–petróleo 1%, obteniéndose 221 aislados, identificándose 14 géneros: Cunninghamella, Penicillium, Paecilomyces, Rhizopus, Syncephalastrum, Periconia, Fusarium, Bipolaris, Monilia, Cladosporium, Gliocladium, Aspergillus, Memnoniella y Helminthosporium. Todos losgéneros a excepción de Helminthosporium demostraron ser hidrocarbonoclásticos y se seleccionaron aquellos que alcanzaron los mayores valores de biomasa (1,00 a 1,95 g). En el suelo tratado con Aspergillus sp. HP-031 se alcanzó el mayor índice de germinación desde los 60 días, la disminución de la toxicidad a un nivel bajo a los 90 días y la mayor eficiencia (73%) en la degradación del HTP, demostrándose elpotencial de este hongo para labiorremediación.</p>

Identificación de hongos filamentosos asociados al suelo del bosque protegido de Prosperina

“…Según lo que se observa las tres estaciones varían muy poco en la clasificación de géneros encontrados, gracias a su cosmopolita distribución y siendo que están en una posición geográfica muy cercana, la poca variación observada en su micro diversidad puede sugerirse que es debido a características del suelo, factores ambientales, la presencia de agua o factores humanos 24 , lo que hace que muchos de ellos presenten características dominantes a estos factores Figura 1. Diversidad de hongos de la Estación 1, Aspergillus flavipes (1), Aspergillus neoflavipes( 2), Penicillium guttulosum(3), Curvularia lunata(4), Aspergillus keveii (5), Trichoderma spirale (6), Gongronella butleri (7), Aspergillus brasiliensis (8), Aspergillus neoflavipes (9), Penicillium limosum (10), Talaromyces liani (11), Cladosporium crousii (12), Aspergillus pseudonomiae( 13), Absidia sp. ( 14), Trichoderma amazonicum (15), Penicillium limosum (16), Talaromyces flavus (17), Penicillium limosum (18), Penicillium limosum (19), Humicola fuscogrisea (20).…”

“…Dentro de la microdiversidad que se encuentran en los suelos de bosque podemos encontrar los filo Ascomycota y Basidiomycota, los cuales predominan a escala mundial en los ecosistemas forestales gracias a las condiciones climáticas que permiten su crecimiento 9 , tal es así como en el agroecosistema K'iphak'iphani en Bolivia predominan de la división Ascomycota los géneros Penicillium, Alternaria, Rhizopus, Mucor, Fusarium y Trichoderma 10 algunos con potencial de biorremediación debido a su eficiencia en la degradación de hidrocarburos de petróleo 11 .…”

“…Purpureocillium lilacinum (1), Purpureocillium lilacinum(2), Curvularia trifolii(3), Talaromyces liani(4), Aspergillus neoflavipes(5), Absidia sp. (6), Trichoderma amazonicum(7), Trichoderma amazonicum(8), Purpureocillium lilacinum(9), Aspergillus assiutensis(10), Trichoderma pleuroti(11), Penicillium vinaceum(12), Trichoderma amazonicum(13), Trichoderma tomentosum(14), Trichoderma amazonicum(15), Trichoderma spirale(16), Penicillium sizovae(17), Trichoderma harzianum(18), Trichoderma amazonicum(19), Fusarium falciforme(20), Absidia sp. (21), Trichoderma amazonicum(22), Clonostachys rossmaniae(23), Penicillium sizovae(24), Mariannaea humícola(25).…”

“…Diversidad de hongos de la Estación 3. Penicillium rubidurum (1), Cladosporium cladosporioides(2), Aspergillus keveii(3), Aspergillus aculeatus(4), Cunninghamella echinulata(5), Purpureocillium sp(6), Fusarium falciforme(7), Penicillium vinaceum(8), Penicillium shearii(9), Fusarium solani(10), Trichoderma erinaceum(11), Penicillium steckii(12) Aspergillus aculeatus(13), Penicillium vinaceum(14), Penicillium vinaceum(15), Penicillium citrinum(15), Absidia caatinguensis(16).…”

Molecular identification of rhizobacterial isolates from Prosopis limensis and their effect on the growth of Raphanus sativus under salt stress

“…Champion were used. First, bacterial inoculants of 1.5 x 10 8 cfu/mL were obtained from cultures in 5 mL DF minimum medium with 0.85 M of NaCl (~5 %) and 3 mM of ACC, constantly agitated once a day for 5 min after 6, 12, 18 and 24 h. Then, forty seeds were placed in plates containing a moisten filter paper at the base and put in stove at 30 °C for twelve days (Contreras & Carreño, 2018).…”