Erratum to: A simple method to evaluate the number of bradyrhizobia on soybean seeds and its implication on inoculant quality control

Abstract

CorrectionThe authors regret that an error appears in Penna etal. (2011). The fourth sentence in the section Formulation and evaluation of the selective medium "This compound was initially solubilized in 98% ethanol, sterilized using 0.2 μm filters, added to 45°C YEM medium, and homogenized to obtain a final concentration of 0,2 g.l-1 of PCNB into the P-YEM medium". Must be replaced by the following "A solution of 10% PCNB in acetone, was diluted 1/5 in Tween 80 0,5%v/v in water, sterilized using 0.2 μm filters, added to 45°C YEM medium, and homogenized to obtain a final concentration of 0,04 g.l -1 of PCNB into the P-YEM medium".

Maintenance and assessment of cell viability in formulation of non‐sporulating bacterial inoculants

“…A limited specificity can be achieved if employing selective growth media for the strain of interest. For B. japonicum for example, the suppression of most fungi and Gram‐positive bacteria was achieved by adding pentachloronitrobenzene and vancomycin to the yeast–mannitol medium, thus making plate counts more specific (Penna et al ., ). Culturing on solid medium may be performed in a higher throughput when preparing samples in multiwell plates, using multichannel pipettes and incubating droplets of small volumes (5–10 μl) instead of streaking the sample (Herigstad et al ., ; Nocker et al ., ).…”

Effect of some environmental conditions on the growth of rhizobium species

“…Yeast extract mannitol broth was supplemented with varying concentrations of NaCl (0.1, 0.5, 1, 2, 4%) to assess tolerance of Rhizobium to salt (Penna et al 2011). A 1 ml of 24 hours old culture was then inoculate on the sterile medium and incubated at 25 o C after which the absorbance was read on the spectrophotometer (Corning Calorimeter 253) at 420 nm to determine the number of cell capable of surviving the osmotic pressure using Shoukry et al (2013) method.…”

Diversidad de los rizobios que nodulan la soja en los suelos de la Pampa húmeda e identificación de cepas para la fabricación de inoculantes comerciales

“…Esto se debe entre otras cosas, a que con frecuencia en los establecimientos agropecuarios, debido a la falta del equipamiento adecuado o por la falta de personal calificado, es complejo realizar convenientemente la práctica de inoculación. Por ello, es útil disponer de semilla preinoculada, y para esto es clave contar con rizobios que se destaquen por la supervivencia en la cubierta de las semillas (Roughley et al 1993;Penna et al 2011).…”

“…Con los datos obtenidos se calculó el Porcentaje de Recuperación (% RFP, Recovery Factor Percentages) de cada aislamiento, en cada muestreo, considerando como valor de referencia el primer recuento realizado a las 2 hs después de la inoculación (ddi) (Penna et al 2011). Se sembraron dos semillas, provenientes de los potes del ensayo de supervivencia, a los 7 y 28 días de almacenamiento, en conos plásticos (espildings) de 20 cm de largo y 250 cc de capacidad, con vermiculita como sustrato.…”

“…Esto además, definirá la distribución de los nódulos en las raíces que a su vez, afectará la eficiencia del sistema de FBN (Davidson & Reuszer 1978;Ferraris et al 2005). Diversos autores han demostrado la importancia de agregar aditivos de protección para las células bacterianas, que prolongan la vida de los rizobios por un período de tiempo de hasta 90 días (Penna et al 2011;Lodeiro 2015). Los resultados de diversos estudios realizados sobre recuentos de rizobios a partir de semillas inoculadas varían, lo que probablemente se deba al tipo de adherente o protector (solución de azucares, aceites, goma arábiga, productos de recubrimiento comerciales) utilizado.…”