Search citation statements
Paper Sections
Citation Types
Year Published
Publication Types
Relationship
Authors
Journals
Введение. Разработка новых подходов к лечению онкологических заболеваний с использованием мышей – опухоленосителей аденокарциномы Эрлиха актуальна, поскольку данный аспект исследования позволяет получить адекватные, воспроизводимые результаты, имеющие перспективы применения в клинической практике. Однако анализ сведений из источников доступной научной литературы показал недостаточную изученность изменения гематологических показателей крови у лабораторных мышей-опухоленосителей. Цель. Оценка особенностей изменения морфологической картины крови мышей – опухоленосителей карциномы Эрлиха при разных, удовлетворяющих требованиям проведения эксперимента, ее биологических моделях. Материалы и методы. Исследование осуществлено на самках аутбредных мышей ICR и самцах инбредных мышей линии Af 2–3-месячного возраста, массой 20,0±2,0 г. Экспериментальные группы были сформированы следующим образом: группа 1 – моделирование АКЭ проводили внутрибрюшинным введением клеток аденокарциномы Эрлиха (в/б) самкам аутбредных мышей ICR (n=20); группа 2 – моделирование СКЭ проводили подкожным введением клеток аденокарциномы Эрлиха (п/к) самкам аутбредных мышей ICR (n=20); группа 3 – моделирование СКЭ проводилось подкожным введением клеток аденокарциномы Эрлиха (п/к) самцам инбредных мышей Af (n=20). Для перевивки опухоли был использован гипердиплоидный штамм аденокарциномы Эрлиха. Кровь забирали из лицевой вены мышей. Гематологические показатели определяли на автоматическом анализаторе URIT VET3000 Plus. Для подсчета лейкоцитарной формулы окрашенные по Романовскому – Гимзе мазки крови просматривали на световом микроскопе LEICA DM2500. Статистическую обработку данных проводили с использованием t-критерия Вилкоксона для зависимых выборок. Результаты между независимыми выборками анализировали с помощью критерия Манна – Уитни. Различия считали достоверными при р<0,05. Результаты. В исследовании установлены гематологические критерии развития опухолевого процесса в период 14 суток после ксенотрансплантации клеток аденокарциномы Эрлиха в объеме 0,2 мл в количестве 2×106 морфологических единиц. В эксперименте на животных созданы модели асцитной карциномы Эрлиха (АКЭ) и ее солидной формы (СКЭ) у самок мышей линии ICR и самцов мышей линии Af. Кровь забирали из лицевой вены мышей два раза: первый раз до прививки опухоли и второй раз на 14-е сутки развития опухолевого процесса. Выделены зависимые и независимые ни от вида, ни от пола, ни от способа инокуляции клеток аденокарциномы Эрлиха изменения параметров морфологической картины крови экспериментальных животных. Заключение. Ксенотрансплантация аденокарциномы Эрлиха мышам к 14-м суткам сопровождается следующими изменениями: в распределении эритроцитов по объему; среднем объеме тромбоцитов, распределении тромбоцитов по объему, количестве лимфоцитов, нейтрофилов, эозинофилов и не оказывает влияния на уровень базофилов крови. Количественные показатели крови мышей-опухоленосителей перспективны для обоснования выбора тест-систем и сопоставления эффективности потенциальных противоопухолевых субстанций, способных повлиять на систему крови. Introduction. The study of new approaches in the treatment of oncological diseases using Ehrlich adenocarcinoma mice is relevant and allows obtaining adequate, reproducible results that have prospects for application in clinical practice. However, the analysis of the sources of scientific literature showed a poor study of hematological blood parameters in laboratory mice-tumor carriers. Purpose. Evaluation of the peculiarities of changes in the morphological picture of blood of Ehrlich carcinoma tumor-bearing mice under different, satisfying the requirements of the experiment, its biological models. Materials and methods. The work was performed on female outbred ICR mice and male inbred Af mice aged 2–3 months, weighing 20.0±2.0 g. The experimental groups were formed as follows: group 1 – EAC modeling was performed by intraperitoneal injection of Ehrlich adenocarcinoma cells to female outbred ICR mice (n=20); group 2 – ESC modeling was performed by subcutaneous injection of Ehrlich adenocarcinoma cells to female outbred ICR mice (n=20); group 3 – ESC modeling was performed by subcutaneous injection of Ehrlich adenocarcinoma cells to male inbred Af mice (n=20). A hyperdiploid strain of Ehrlich’s adenocarcinoma was used for tumor transplantation. Blood was taken from the facial vein of mice. Hematological parameters were determined on an automatic analyzer URIT VET3000 Plus. To calculate the leukocyte count, Romanovsky – Giemsa- stained blood smears were examined using a LEICA DM2500 light microscope. Statistical processing was performed using the Wilcoxon t-test for dependent samples. The results between independent samples were analyzed using the Mann – Whitney test. Differences were considered significant at p<0.05. Results. Hematological criteria of the tumor process development in the period of 14 days after xenotransplantation of 0,2 ml Erlich adenocarcinoma cells in the amount of 2×106 morphological units were established in the research. We modeled Ehrlich ascites carcinoma (EAC) and its solid form (ESC) in female ICR mice and male ICR mice. Blood was collected from the facial vein of mice twice: the first time before tumor inoculation and the second time on the 14th day of tumor development. We distinguished the changes of the internal environment parameters which were dependent on neither species, nor sex, nor the way of Ehrlich adenocarcinoma cell inoculation. Conclusion. Xenotransplantation of adenocarcinoma of Ehrlich into mice by 14 days is accompanied by the following changes in: red blood cell volume distribution; average volume of platelets, distribution of platelets by volume, the number of lymphocytes, neutrophils, eosinophils, and has no effect on the level of blood basophils. Quantitative blood indicators of tumor-bearing mice are promising for justifying the choice of test system and the effectiveness of the strategy for the effectiveness of antitumor substances capable of indicators in the blood system.
Введение. Разработка новых подходов к лечению онкологических заболеваний с использованием мышей – опухоленосителей аденокарциномы Эрлиха актуальна, поскольку данный аспект исследования позволяет получить адекватные, воспроизводимые результаты, имеющие перспективы применения в клинической практике. Однако анализ сведений из источников доступной научной литературы показал недостаточную изученность изменения гематологических показателей крови у лабораторных мышей-опухоленосителей. Цель. Оценка особенностей изменения морфологической картины крови мышей – опухоленосителей карциномы Эрлиха при разных, удовлетворяющих требованиям проведения эксперимента, ее биологических моделях. Материалы и методы. Исследование осуществлено на самках аутбредных мышей ICR и самцах инбредных мышей линии Af 2–3-месячного возраста, массой 20,0±2,0 г. Экспериментальные группы были сформированы следующим образом: группа 1 – моделирование АКЭ проводили внутрибрюшинным введением клеток аденокарциномы Эрлиха (в/б) самкам аутбредных мышей ICR (n=20); группа 2 – моделирование СКЭ проводили подкожным введением клеток аденокарциномы Эрлиха (п/к) самкам аутбредных мышей ICR (n=20); группа 3 – моделирование СКЭ проводилось подкожным введением клеток аденокарциномы Эрлиха (п/к) самцам инбредных мышей Af (n=20). Для перевивки опухоли был использован гипердиплоидный штамм аденокарциномы Эрлиха. Кровь забирали из лицевой вены мышей. Гематологические показатели определяли на автоматическом анализаторе URIT VET3000 Plus. Для подсчета лейкоцитарной формулы окрашенные по Романовскому – Гимзе мазки крови просматривали на световом микроскопе LEICA DM2500. Статистическую обработку данных проводили с использованием t-критерия Вилкоксона для зависимых выборок. Результаты между независимыми выборками анализировали с помощью критерия Манна – Уитни. Различия считали достоверными при р<0,05. Результаты. В исследовании установлены гематологические критерии развития опухолевого процесса в период 14 суток после ксенотрансплантации клеток аденокарциномы Эрлиха в объеме 0,2 мл в количестве 2×106 морфологических единиц. В эксперименте на животных созданы модели асцитной карциномы Эрлиха (АКЭ) и ее солидной формы (СКЭ) у самок мышей линии ICR и самцов мышей линии Af. Кровь забирали из лицевой вены мышей два раза: первый раз до прививки опухоли и второй раз на 14-е сутки развития опухолевого процесса. Выделены зависимые и независимые ни от вида, ни от пола, ни от способа инокуляции клеток аденокарциномы Эрлиха изменения параметров морфологической картины крови экспериментальных животных. Заключение. Ксенотрансплантация аденокарциномы Эрлиха мышам к 14-м суткам сопровождается следующими изменениями: в распределении эритроцитов по объему; среднем объеме тромбоцитов, распределении тромбоцитов по объему, количестве лимфоцитов, нейтрофилов, эозинофилов и не оказывает влияния на уровень базофилов крови. Количественные показатели крови мышей-опухоленосителей перспективны для обоснования выбора тест-систем и сопоставления эффективности потенциальных противоопухолевых субстанций, способных повлиять на систему крови. Introduction. The study of new approaches in the treatment of oncological diseases using Ehrlich adenocarcinoma mice is relevant and allows obtaining adequate, reproducible results that have prospects for application in clinical practice. However, the analysis of the sources of scientific literature showed a poor study of hematological blood parameters in laboratory mice-tumor carriers. Purpose. Evaluation of the peculiarities of changes in the morphological picture of blood of Ehrlich carcinoma tumor-bearing mice under different, satisfying the requirements of the experiment, its biological models. Materials and methods. The work was performed on female outbred ICR mice and male inbred Af mice aged 2–3 months, weighing 20.0±2.0 g. The experimental groups were formed as follows: group 1 – EAC modeling was performed by intraperitoneal injection of Ehrlich adenocarcinoma cells to female outbred ICR mice (n=20); group 2 – ESC modeling was performed by subcutaneous injection of Ehrlich adenocarcinoma cells to female outbred ICR mice (n=20); group 3 – ESC modeling was performed by subcutaneous injection of Ehrlich adenocarcinoma cells to male inbred Af mice (n=20). A hyperdiploid strain of Ehrlich’s adenocarcinoma was used for tumor transplantation. Blood was taken from the facial vein of mice. Hematological parameters were determined on an automatic analyzer URIT VET3000 Plus. To calculate the leukocyte count, Romanovsky – Giemsa- stained blood smears were examined using a LEICA DM2500 light microscope. Statistical processing was performed using the Wilcoxon t-test for dependent samples. The results between independent samples were analyzed using the Mann – Whitney test. Differences were considered significant at p<0.05. Results. Hematological criteria of the tumor process development in the period of 14 days after xenotransplantation of 0,2 ml Erlich adenocarcinoma cells in the amount of 2×106 morphological units were established in the research. We modeled Ehrlich ascites carcinoma (EAC) and its solid form (ESC) in female ICR mice and male ICR mice. Blood was collected from the facial vein of mice twice: the first time before tumor inoculation and the second time on the 14th day of tumor development. We distinguished the changes of the internal environment parameters which were dependent on neither species, nor sex, nor the way of Ehrlich adenocarcinoma cell inoculation. Conclusion. Xenotransplantation of adenocarcinoma of Ehrlich into mice by 14 days is accompanied by the following changes in: red blood cell volume distribution; average volume of platelets, distribution of platelets by volume, the number of lymphocytes, neutrophils, eosinophils, and has no effect on the level of blood basophils. Quantitative blood indicators of tumor-bearing mice are promising for justifying the choice of test system and the effectiveness of the strategy for the effectiveness of antitumor substances capable of indicators in the blood system.
The main goal of medicine has been and remains the desire to preserve the health of the population, increase human life expectancy and its quality. For those purposes, it is necessary to constantly improve treatment measures, create and introduce into medical practice new methods of therapy, innovative medicines, guided by strict rules of evidence of their high effectiveness and safety, study the mechanisms of physiological processes of a living organism in normal conditions and in pathology, the possibilities of correction and prevention of disease processes, and this means the need to conduct research, including those involving animals. The modern ethical and legal framework for research involving animals contains a requirement for mandatory examination of a research project by an ethical committee, monitoring its implementation, and analysis of the results. An ethics committee is a structure implemented into the research process to help researchers navigate the complex network of guidelines, rules and best practices, as well as the existing legal framework for conducting scientific research that guarantees quality results of work that do not violate these principles and restrictions. The local ethics committee is responsible for ensuring that research conducted in the territory under its supervision complies with modern ethical standards. This article presents the experience of the local ethics committee of the Kazan State Medical University in the ethical review of research projects involving animals, and substantiates the list and content of the requirements for documents submitted by the researcher for ethical review. The shortcomings identified in the preclinical research protocols submitted for examination were separately analyzed, and references were provided to the ethical and legal framework existing in the Russian Federation.
Corneal lesions account for at least 1/4 of all ocular pathologies. This frequency is due to the fact that the outer eye’ shell is constantly exposed to adverse environmental factors and is quickly involved in the pathological process. The most spread disease is corneal erosion, the main treatment of which is the prevention of infectious complications. The widespread prevalence of corneal erosion and antibiotic resistance, which develops with the use of antibacterial drugs, led to the search for alternative therapies, one of which is lactoferrin.The purpose of our work was to study the effect of lactoferrin solution on the rate of corneal erosion epithelization in the experiment, to assess the effect of lactoferrin solution on the growth of pathogenic microflora against the background of corneal deepithelization in the experiment. An experimental model of corneal erosion was reproduced on 12 male chinchilla rabbits, divided into 2 groups (lactoferrin group and placebo group). Total scarification of the cornea was performed with an eye scalpel after preliminary epibulbar anesthesia with 0.4 % oxybuprocaine solution. Inoculations from the conjunctiva of the rabbits’ eyes to whey broth were carried out on the 0th, 3rd and 7th days of the experiment using sterile glass rods in the clinical diagnostic center of the city of Ryazan. Complete epithelialization of the cornea occurred in group 1 from 3 to 5 days, in group 2 — from 4 to 7 days. The average period of epithelialization in group 1 was 3.75 ± 0.62 days. In the second group — 5.42 ± 0.79 days. The use of a lactoferrin solution at a concentration of 0.5 mg/ml 3 time per day led to an acceleration of corneal epithelialization. In both groups, regardless of therapy, complete epithelialization of the cornea occurred by the 7th day. As a result of the experiment, there was no growth of microflora against the background of corneal de-epithelialization. Our data indicate that the use of a lactoferrin solution led to the suppression of the growth of pathogenic microflora, while placebo did not affect the growth of pathogenic microorganisms.
scite is a Brooklyn-based organization that helps researchers better discover and understand research articles through Smart Citations–citations that display the context of the citation and describe whether the article provides supporting or contrasting evidence. scite is used by students and researchers from around the world and is funded in part by the National Science Foundation and the National Institute on Drug Abuse of the National Institutes of Health.
customersupport@researchsolutions.com
10624 S. Eastern Ave., Ste. A-614
Henderson, NV 89052, USA
This site is protected by reCAPTCHA and the Google Privacy Policy and Terms of Service apply.
Copyright © 2024 scite LLC. All rights reserved.
Made with 💙 for researchers
Part of the Research Solutions Family.