Eugenol como anestésico para el manejo de juveniles de Pavón (Cichla orinocensis)

Abstract

ResumenCon el objeto de establecer una concentración anestésica de eugenol óptima para una adecuada manipulación de juveniles de Pavón (Cichla orinocensis), 24 juveniles (57,65 ± 43 g y 16.44 ± 1,17 cm de longitud estándar) provenientes de la estación Piscícola Experimental Casa Piedra de la Fundación Orinoquia de Puerto Carreño, Vichada, Colombia, fueron sometidos a diferentes concentraciones de eugenol (30, 40 y 50 mg/L) y un grupo control. Se presentaron diferencias estadísticamente significativas entre los tratamientos tanto para los tiempos de inducción como de recuperación con las concentraciones de 20, 30 y 50 mg/L (p<0,05), siendo el tratamiento de 20 mg/L el que presento el mayor tiempo de inducción (133±63,21 segundos) y el tratamiento de 50 mg/L presento el menor tiempo de inducción (46±17,51 segundos), los tiempos de recuperación del experimento aumentaron conforme aumentaban las concentraciones anestésicas empleadas, se observaron diferencias significativas (p<0,05) entre los tiempos de recuperación de cada tratamiento. La concentración anestésica de eugenol recomendada para juveniles de pavón (C. orinocensis) obtenida en este trabajo es de 35 mg/L. Palabras claves:Eugenol, Cichla orinocensis, anestésico, repoblamiento. AbstractIn order to establish an optimal concentration of anesthetic eugenol for proper handling of juvenile Pavon (Cichla orinocensis), 24 juveniles (43 ± 57.65 g and 16.44 ± 1.17 cm standard length) from the station Experimental Fish Foundation Orinoquia, Stone House of Puerto Carreño, Vichada, Colombia, were subjected to different concentrations of eugenol (30, 40 and 50 mg / L) and a control group. Statistically significant differences between treatments, for induction times and recovery time with concentrations of 20, 30 and 50 mg / L (p <0.05) were presented. Is the treatment of 20 mg / L which

Stress related blood values in Scyliorhinus canicula as live-indicators of physiological status after bottom trawling capture activity

“…To determinate if the sharks were alive, fish were periodically agitated by stroking their tails or splashing the water in the tank. Only dogfish showing clear reactions to stimuli were immersed in a second water tank of 50 l for 10 min containing an anesthetic solution of 50 mg/l Eugenol ( Álvarez-Perdomo et al, 2016). Blood was quickly collected from anesthetized specimens via the caudal vein using a 21gauge needle and a heparinized syringe to avoid clotting, and samples was then stored in 1 ml vials at (0-1 • C) inside in a container filled with ice (Lawrence et al, 2018).…”