ZusammenfassungFragestellung: Das variante CD44 v7/8-Epitop wird in ca. 70% der invasiven Zervixkarzinome an der Zelloberfläche exprimiert und bietet sich somit als tumorspezifisches Antigen zur gentechnischen In-vitro-Manipulation der Erkennungsspezifität von TLymphozyten an. Dies wird durch die Klonierung und Transduktion des Gens für einen chimären T-Zell-Rezeptor (cTCR) erreicht, in welchem das Einzelketten-Fv-Fragment des CD44v7/8-spezifischen monoklonalen Antikörpers VFF 17 mit dem Gen der signaltransduzierenden Zeta-Kette des cTCR fusioniert wird. Die Schwierigkeit liegt darin, dass viele Gentransfermethoden sich nur begrenzt für primäre humane T-Zellen eignen. Ziel unserer Arbeit war somit primär die Etablierung der Methodik der Gentransduktion von primären humanen T-Zellen, um die Voraussetzung für die Expression des chimären T-Zell-Rezeptors in primä-re humane T-Zellen zu schaffen und CD44v7/8-positive Tumorzellen zu erkennen. Methodik: Das scFv(VFF 17)y:a:z-Fusions-Gen wurde zunächst mittels retroviraler Transduktion in die Galv-pseudotypische amphotrope Verpackungs-Zelllinie PG13 eingebracht. Primäre humane T-Zellen wurden durch Inkubation mit anti-CD3-und anti-CD28-Antikörpern aktiviert. Der retrovirale Gentransfer erfolgte auf mit rekombinantem Fibronektin beschichteten Platten. Ergebnisse: Der retrovirale Gentransfer des scFv(VFF 17)y:a:zFusions-Gens in die Verpackungs-Zelllinie PG13 war erfolgreich. Die Expression des chimären Rezeptors konnte auf Transkrip-
AbstractPurpose: The variant epitope CD44v7/8 is frequently expressed on cervical carcinoma. Therefore CD44v7/8 is a tumour-specific antigen and may play a role as a promising target for tumourspecific immunotherapy. Since many gene transfer methods in human T-cells are limited and problematical, the primary aim of our study was to develop a method for the transduction of Tlymphocytes with a CD44v7/8 target specifity. Material and Methods: The genes coding for the single chain fragment scFv of the mononuclear antibody VFF 17 and of the zchain of the TCR (T-cell receptor) complex were fused and inserted into a retroviral vector. We retrovirally transduced primary human T-cells. The gene transfer was tested by PCR (polymerase chain reaction). A FACS (fluorescent activated cell sorter) and a functionality test were performed to investigate the expression of the chimeric receptor of primary human T-cells. Results: The mRNA expression of the chimeric receptor on the transduced human T-cells could be demonstrated. But on the protein level no expression of the scFv(VFF 17)y:a:z-fusion protein could be detected. Discussion: Further studies will show whether the undetected expression of the surface protein on the transduced T-cells is due to a pseudotransduction, a not performed translation or an incorrect folding of the protein and consequently a flawed transportation of the protein to the surface.