Germinación de esclerocios y formación de ascoporas de Claviceps gigantea Fuentes, De la Isla, Ullstrup y Rodríguez

Abstract

La enfermedad “diente de caballo” del maíz (<em>Claviceps gigantea</em>) afecta hasta 90 % del grano. Se estudiaron condiciones para germinación de esclerocios, formación de estructuras sexuales y se describe parte del ciclo del hongo en laboratorio y campo. Se estableció un diseño con sustrato y tiempo de incubación a 4 °C. Se evaluaron porcentaje de esclerocios germinados, tiempo de germinación y formación de cabezuelas estromáticas. En laboratorio, los esclerocios germinaron solamente en carbón residual después de 3 meses a 4 °C y 2 meses a 22-24 °C de incubación resultando en 55 % de germinación. Esclerocios germinados producen en promedio cinco cabezuelas por esclerocio 15 d después de la aparición de los primordios. En campo, los primordios aparecieron cuando los esclerocios se incubaron 3 meses a 4 °C y 64 d a temperatura promedio de 14.07 °C. En campo y laboratorio, la liberación de ascosporas se observó 23 d después de aparecer de los primordios. La aparición de cabezuelas estromáticas, su desarrollo y maduración en el mismo esclerocio no fué sincronizado. Se documentó la liberación de ascosporas largas y delgadas emergiendo de cabezuelas estromáticas. El patógeno se identificó morfológica y molecularmente como <em>Claviceps gigantea.</em>

Plant–Fungi Interactions: Where It Goes?

“…Plants are always prone to interact with various microbes in different ways which include phytopathogenic and symbiotic associations. In phytopathogenic associations fungi interact with different lifestyles, namely necrotrophic (e.g., Alternaria alternata, A. solani, A. brassicae, Aspergillus flavus, Bipolaris sorokiniana, Botrytis cinerea, Claviceps gigantean, Colletotrichum beeveri, C. gloeosporioides, C. graminicola, C. musae, Sclerotinia sclerotiorum, Stenocarpella maydis, Zymoseptoria tritici) [4][5][6][7][8][9][10][11][12][13][14][15][16]; biotrophic (e.g., Blumeria graminis, Cladosporium fulvum, Hemileia vastatrix, Melampsora lini, Phakopsora pachyrhizi, Puccinia arachidis, Puccinia graminis, Puccinia kuehnii, Puccinia striiformis, Sporisorium scitamineum, Ustilago maydis) [17][18][19][20][21][22][23][24][25][26][27][28]; and hemibiotrophic (e.g., Colletotrichum higginsianum, C. trifolii, Fusarium equiseti, F. oxysporum, F. sacchari, Ganoderma boninense, Magnaporthe oryzae, Phomopsis longicolla) [29][30][31][32][33][34][35][36]. A plethora of fungi also live as symbiotic, e.g., Funneliformis mosseae, Glomus albidum, G. etunicatum, G. mosseae, G. fasciculatum, Glomus albidum, G. etunicatum, G. mosseae, G. fasciculatum, Glomus mosseae, Trichoderma virens [37][38][39][40][41]…”

Ergot Alkaloid Biosynthesis in the Maize (Zea mays) Ergot Fungus Claviceps gigantea

“…Feed containing sorghum ergot ( C. africana ), which has a similar array of dihydrogenated ergot alkaloids as those found in C. gigantea but also accumulates the dihydroergopeptine 6 , was refused by cattle and pigs and was associated with agalactia in dairy cattle as well as in pigs . The chemical composition of maize ergot is thus a relevant issue; that issue is compounded by the importance of maize as a food staple and as a component of animal feed as well as by the high incidence of the disease in areas close to Mexico City …”

CP-Tania 5, white maize variety horse’s tooth (Claviceps gigantea) resistant for Mexican highlands

“…Estas ascosporas son las estructuras infectivas del hongo que penetran la mazorca infectando estigmas frescos. En su fase asexual, los esclerocios desarrollan micro y macroconidios que también pueden penetrar en la mazorca infectando los estigmas frescos (Moreno-Moreno, 2016).…”

“…These ascospores are the infectious structures of the fungus that penetrate the ear after infecting fresh stigmas. In their asexual phase, the sclerotia develop micro and macroconidia, which can also penetrate the ear, infecting the fresh stigmas (Moreno-Moreno, 2016).…”