Nasal Shedding of Equid Herpesvirus Type 1 and Type 4 in Hospitalized, Febrile Horses

Sonis, Jennifer M.; Goehring, Lutz S.

doi:10.1016/j.jevs.2012.11.002

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“…In another study of 124 hospitalised critically ill horses, no evidence of EHV-1 shedding was detected, although low levels of latency could not be excluded (Carr, Schott & Pusterla 2011). Sonis and Goehring (2013) concluded from a study of hospitalised febrile horses that nasal shedding of EHV-1 and EHV-4 was a rare event, as only one of the 64 febrile horses was PCR positive for EHV-4 and none were positive for EHV-1.…”

Section: Discussionmentioning

confidence: 99%

Failure to detect equid herpesvirus types 1 and 4 DNA in placentae and healthy new-born Thoroughbred foals

Brown

Kydd

et al. 2019

J. S. Afr. Vet. Assoc.

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Equid herpesvirus type 1 is primarily a respiratory tract virus associated with poor athletic performance that can also cause late gestation abortion, neonatal foal death and encephalomyelopathy. Horizontal transmission is well described, whereas evidence of vertical transmission of equid herpesvirus type 1 associated with the birth of a healthy foal has not been demonstrated. This study sampled a population of Thoroughbred mares ( n = 71), and their healthy neonatal foals and foetal membranes, to test for the presence of both equid herpesvirus types 1 and 4 using a quantitative polymerase chain reaction assay. Foetal membrane swabs and tissue samples were taken immediately post-partum, and venous blood samples and nasal swabs were obtained from both mare and foal 8 h after birth. Neither equid herpesvirus type 1 nor equid herpesvirus type 4 nucleic acid was detected in any sample, and it was concluded that there was no active shedding of equid herpesvirus types 1 and 4 at the time of sampling. Consequently, no evidence of vertical transmission of these viruses could be found on this stud farm during the sampling period.

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Section: Discussionmentioning

confidence: 99%

Failure to detect equid herpesvirus types 1 and 4 DNA in placentae and healthy new-born Thoroughbred foals

Brown

Kydd

et al. 2019

J. S. Afr. Vet. Assoc.

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“…Allen et al 105 detektierten die potenziell neuropathogenen EHV-1 Stämme D752 bei 18 % der latent infizierten Zuchtstuten. In stressigen Situationen kann es zur Reaktivierung der Infektion kommen 15 , 48 , 97 , weshalb Stress im Bestand (lange Transporte, Fütterungsänderungen, parasitäre Infektionen, eine hohe Besatzdichte der Tiere etc.) vermieden werden sollte 46 , 47 , 48 .…”

Section: Hygienemaßnahmen Bei Ausgewählten Infektionenunclassified

“…Wenn sie von epidemiologischer, ökonomischer oder zoonotischer Bedeutung sind, sind sie in Deutschland anzeigepflichtig, wie z. B. WNV 15 . Meldepflichtig sind z.…”

Section: Introductionunclassified

Vorgehensweise und Hygienemaßnahmen beim Ausbruch von Herpes, Influenza, Druse oder Infektionen mit multiresistenten Keimen

Gehlen

Rutenberg

Simon

et al. 2022

Tierarztl Prax Ausg G Grosstiere Nutztiere

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ZusammenfassungDas Ziel dieses Reviews ist, die allgemein gültigen Hygienemaßnahmen im Pferdestall zusammenzufassen sowie aktuelle Empfehlungen bei Ausbruch relevanter Infektionskrankheiten zu liefern. Die allgemeine Sauberkeit, Handhygiene, stressarme Haltung sowie regelmäßige Entwurmungen und Impfungen gehören dabei zur Basishygiene im Pferdebestand. Wichtige Maßnahme in der Infektionsprävention stellen dabei die Quarantäne aller rückkehrenden oder neu eingestallten Equiden und das regelmäßige Waschen und Desinfizieren der Hände zur Reduktion der Übertragung von Krankheitserreger dar.Die Erstellung eines Hygieneplans, welcher die allgemeinen Biosicherheitsregeln sowie die Vorgehensweise für den Fall eines Ausbruchs einer ansteckenden Erkrankung, Zoonose bzw. Infektion mit multiresistenten Erregern (MRE) festlegt, wird empfohlen. Bereits bei begründetem Verdacht auf eine dieser Erkrankungen sollten weitere, über die übliche Basishygiene hinausgehende Maßnahmen (inklusive Schutzkleidung, Flächen- und Gerätereinigung und Desinfektion sowie Isolation potenziell erkrankter Tiere) eingeleitet werden. Die erforderlichen diagnostischen Proben sollen möglichst zeitnah entnommen werden, um einen Krankheitsverdacht schnellstmöglich zu bestätigen. Die entsprechenden Schutzmaßnahmen sind dem Übertragungsrisiko der Infektionserreger und der Art ihrer potenziellen Übertragung anzupassen.Neben dem „Lock-Down“ des ganzen Stalls, der Klinik oder des Turnier-/Veranstaltungsgeländes spielt die räumliche Trennung der Tiere eine wichtige Rolle. Ein „Ampelsystem“ wird empfohlen, bei dem kranke oder positiv getestete Pferde in die rote Gruppe eingeordnet werden („erkrankt“). Tiere mit möglichem Kontakt zum pathogenen Agens sollten der gelben Gruppe („verdächtig“) zugeteilt und regelmäßig auf Anzeichen der Erkrankung und Fieber kontrolliert werden. In der grünen Kategorie („unverdächtig“) befinden sich klinisch unauffällige Pferde ohne Kontakt zu erkrankten Tieren. Zwischen den räumlich getrennten Bereichen sollte die Schutzkleidung gewechselt werden und eine entsprechende Desinfektion stattfinden.Alle erweiterten Hygienemaßnahmen sollten beibehalten werden bis alle Tiere negativ getestet wurden und keine Symptome der Erkrankung über eine ausreichend lange Zeit zeigen.

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“…Age, breed, sex, and vaccination status have been incriminated as possible factors associated with the development of EHM [ 9 , 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15 ]. Further, long-distance transportation, corticosteroid administration, hospitalization, co-infection, and stress have been incriminated as triggering factors for the reactivation of EHV-1 [ 16 , 17 , 18 , 19 ].…”

Section: Introductionmentioning

confidence: 99%

Investigation of the Use of Non-Invasive Samples for the Molecular Detection of EHV-1 in Horses with and without Clinical Infection

Price¹,

Barnum

Mize³

et al. 2022

Pathogens

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The purpose of this study was to explore sampling options for a reliable and logistically more feasible protocol during a large EHV-1 outbreak. Seventeen horses with clinical infection as well as nineteen healthy herdmates, all part of an EHM outbreak, were enrolled in the study. Each horse was sampled two–four times at intervals of 2–6 days during the outbreak. All samples were collected using 6′′ rayon-tipped swabs. Nasal secretions were used as the diagnostic sample of choice. Additional samples, including swabs from the muzzle/nares, swabs from the front limbs, rectal swabs, swabs of the feed bin, and swabs of the water troughs were collected as well. All swabs were tested for the presence of EHV-1 by qPCR. With the exception of two EHV-1 qPCR-positive swabs from two different horses, all remaining swabs collected from healthy herdmates tested qPCR-negative for EHV-1. For horses with clinical infection, EHV-1 was detected in 31 nasal swabs, 30 muzzle/nares swabs, 7 front limb swabs, 7 feeders, 6 water troughs and 6 rectal swabs. Not all positive muzzle/nares swabs correlated with a positive nasal swab from the same set, however, and all other positive swabs did correlate with a positive nasal swab in their respective set. The agreement between nasal swabs and muzzle/nares swabs was 74%. The sampling of non-invasive swabs from the muzzle/nares should facilitate the identification of EHV-1 shedders during an outbreak, allowing for prompt isolation and implementation of biosecurity measures.

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Nasal Shedding of Equid Herpesvirus Type 1 and Type 4 in Hospitalized, Febrile Horses

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Failure to detect equid herpesvirus types 1 and 4 DNA in placentae and healthy new-born Thoroughbred foals

Failure to detect equid herpesvirus types 1 and 4 DNA in placentae and healthy new-born Thoroughbred foals

Vorgehensweise und Hygienemaßnahmen beim Ausbruch von Herpes, Influenza, Druse oder Infektionen mit multiresistenten Keimen

Investigation of the Use of Non-Invasive Samples for the Molecular Detection of EHV-1 in Horses with and without Clinical Infection

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