Innovative techniques, such as environmental DNA (eDNA) metabarcoding, are now promoting broader biodiversity monitoring at unprecedented scales, because of the reduction in time, presumably lower cost, and methodological efficiency. Our goal was to assess the efficiency of established inventory techniques (live‐trapping grids, pitfall traps, camera trapping, mist netting) as well as eDNA for detecting Amazonian mammals. For terrestrial small mammals, we used 32 live‐trapping grids based on Sherman and Tomahawk traps (total effort of 10,368 trap‐nights); in addition to 16 pitfall traps (1,408 trap‐nights). For bats, we used mist nets at 8 sites (4,800 net hours). For medium and large mammals, we used 72 camera trap stations (5,208 camera‐days). We identified vertebrate and mammal taxa based on eDNA analysis (12S region, with V05 and Mamm01 markers) from water samples, including a total of 11 3‐km transects for stagnant water sampling and seven small streams for running water sampling. A total of 106 mammal species were recorded. Building on sample‐based rarefaction and extrapolation curves, both trapping grids and pitfall were successful, recording 91.16% and 82.1% of the expected species for these techniques (~22 and ~9 species), and 16.98% and 6.60% of the total recorded mammal species, respectively. Mist nets recorded 83.2% of the expected bat species (~48), and 34.91% of the total recorded species. Camera trapping recorded 99.2% of the predicted large‐ and medium‐sized species (~31), and 33.02% of the total recorded species. eDNA recorded 75.4% of the expected mammal species for this technique (~68), and 47.0% of the total recorded species. eDNA resulted in a useful tool that saves on effort and reduces sampling costs. This study is among the first to show the large potential of eDNA metabarcoding for assessing Amazonian mammal communities, providing, in combination with conventional techniques, a rapid overview of mammal diversity with broad applications to monitoring, management and conservation. By including appropriate genetic markers and updated reference databases, eDNA metabarcoding method can be extended to the whole vertebrate community.
Synthetic insecticides can affect those who use it may be teratogenic, mutagenic or carcinogenic, which is why seeking alternatives to control pests that are readily available, low cost and biodegradable as extracts from plants. In this paper the effect of aqueous extract of Chenopodium ambrosioides L. (Amaranthaceae) and neonicotinoid insecticide imidacloprid with five concentrations on adult coccinellid Cryptolaemus montrouzieri, using bottled water as a control. It was found that the aqueous extract of C. ambrosioides showed no insecticidal effect on adults of C. montrouzieri at 24h and 120h exposure, showing effect just after 144 h of exposure an LC50 of 1.4 x 103 mg•L-1, in contrast the imidacloprid presented to 24 h LC50 of 43.38 mg•L-1. Our results show that the extract of C. ambrosioides could be compatible with C. montrouzieri in integrated pest management.Keywords: chenopodium ambrosioides, Cryptolaemus montrouzieri, imidacloprid, toxicity resumen Los insecticidas sintéticos pueden afectar a quienes los usan, pues pueden ser teratogénicos, mutagénicos o carcinogénicos, es por esto que se busca alternativas para el control de plagas que sean de fácil obtención, bajo costo y sean biodegradables como los extractos provenientes de las plantas. En el presente trabajo se evaluó el efecto del extracto acuoso de Chenopodium ambrosioides L. (Amaranthaceae) y del insecticida neonicotinoide imidacloprid en cinco concentraciones sobre adultos del coccinélido Cryptolaemus montrouzieri, utilizándose agua embotellada como control. Se encontró que el extracto acuoso de C. ambrosioides no presentó efecto insecticida sobre adultos de C. montrouzieri a las 24h y 120h de exposición, mostrando recién efecto a las 144 h de exposición con una CL50 de 1,4 x 103 mg.L-1 , en cambio el Imidacloprid presentó a las 24 h una CL50 de 43,38 mg.L-1. Nuestros resultados señalan que podría ser compatible el uso del extracto de C. ambrosioides junto con C. montrouzieri en el manejo integral de plagas.
La conservación ex situ de fauna silvestre en cautiverio requiere de condiciones óptimas para queesta pueda desarrollarse y reproducirse. Este trabajo analiza la influencia filogenética en elcomportamiento de quince especies de aves en cautiverio (Ara ararauna, Ara chloropterus, Aramacao, Baryphthengus martii, Mitu mitu, Ortalis guttata, Penelope albipennis, Phoenicopteruschilensis, Phoenicopterus ruber, Primolius couloni, Pteroglossus castanotis, Sarcoramphuspapa, Spheniscus humboldti, Cyanocorax mystacalis y Anas bahamensis) en dos zoológicos deLima, Perú. Para ello se elaboraron etogramas en los Zoológicos “Parque de las Leyendas” y“Parque Zoológico Huachipa”. Se encontraron 55 comportamientos divididos en 10 categorías,de los cuales la mayoría resultó ser de manutención (36,4%). En base a estos caracteres se realizóun dendrograma usando el software TNT® determinándose que el comportamiento estuvoinfluenciado por el entorno social de las aves, pero identificándose aún ciertos patronesfilogenéticos.
En el Perú se registran al menos 180 especies de murciélagos. Sin embargo, son pocos los estudios acerca de sus ectoparásitos, dentro de los cuales destacan las denominadas moscas de murciélagos (Diptera: Streblidae y Nycteribiidae), en los cuales se estima un total de 158 especies en la región Neotropical. En el Perú, una de las regiones con menos información es la costa. En este estudio actualizamos el conocimiento de las asociaciones ectoparásito-hospedero en murciélagos de la costa peruana, una de las regiones ecologicas con más degradación y pérdida de hábitat. Se evaluaron cinco localidades en las regiones de Piura, Lima y Tacna. Se capturaron 85 murciélagos pertenecientes a 7 especies; 4 de Phyllostomidae, 2 de Molossidae y 1 de Vespertilionidae. Se encontraron seis especies de dípteros (Diptera: Streblidae) y un hemíptero (Hemiptera: Polyctenidae) y se reporta por primera vez algunas de estas asociaciones en las regiones de Lima y Piura. Se reporta también a Anoura peruana como hospedero de Anastrebla modestini (Streblidae) en una colonia reproductiva compartida con Platalina genovensium, y por primera vez para la región de Piura, el co-parasitismo de los estréblidos Megistopoda aranea, Aspidoptera phyllostomatis y Metelasmus pseudopterus en un mismo individuo de Artibeus fraterculus.
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