Direitos para esta edição cedidos à Atena Editora pelos autores. Todo o conteúdo deste livro está licenciado sob uma Licença de Atribuição Creative Commons. Atribuição-Não-Comercial-NãoDerivativos 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0). O conteúdo dos artigos e seus dados em sua forma, correção e confiabilidade são de responsabilidade exclusiva dos autores, inclusive não representam necessariamente a posição oficial da Atena Editora. Permitido o download da obra e o compartilhamento desde que sejam atribuídos créditos aos autores, mas sem a possibilidade de alterá-la de nenhuma forma ou utilizá-la para fins comerciais. Todos os manuscritos foram previamente submetidos à avaliação cega pelos pares, membros do Conselho Editorial desta Editora, tendo sido aprovados para a publicação com base em critérios de neutralidade e imparcialidade acadêmica. A Atena Editora é comprometida em garantir a integridade editorial em todas as etapas do processo de publicação, evitando plágio, dados ou resultados fraudulentos e impedindo que interesses financeiros comprometam os padrões éticos da publicação. Situações suspeitas de má conduta científica serão investigadas sob o mais alto padrão de rigor acadêmico e ético.

Esta obra está licenciada com uma Licença Creative Commons Atribuição 4.0 Internacional (CC BY 4.0). O conteúdo desta obra e seus dados em sua forma, correção e confiabilidade são de responsabilidade exclusiva dos autores. Permitido o download da obra e o compartilhamento desde que sejam atribuídos créditos aos autores, mas sem a possibilidade de alterá-la de nenhuma forma ou utilizá-la para fins comerciais.

A utilização de sêmen de equinos de elevado mérito genético aumenta a cada ano, uma vez que a técnica de reprodução assistida mais comum nessa espécie é a inseminação artificial, com sêmen fresco, refrigerado ou congelado. Essa alta demanda mercadológica obriga a entrega de um produto de qualidade. Entretanto, nem todos os machos possuem uma boa congelabilidade e, com isso, a maneira mais usual de transporte é resfriando o sêmen após diluição prévia. O preparo do sêmen para resfriamento requer um processo de separação dos espermatozoides e isso pode causar danos irreversíveis. O presente estudo teve por objetivo avaliar a influência de diferentes métodos de separação espermática na melhoria do sêmen resfriado. Foram utilizados três garanhões e o ejaculado, após avaliação de motilidade e vigor, foi diluído e dividido em três grupos: um grupo controle (CONT), sem passar pela centrifugação; um grupo centrifugado (CENT) e o terceiro grupo foi usado o SpermFilter (SPERM). Após essa etapa, o sêmen foi resfriado por 24 horas. Os parâmetros pós resfriamento analisados foram: integridade de membrana, por meio da coloração eosina/negrosina e patologia espermática, divididos em espermatozoides normais, com defeitos maiores e menores, de acordo com o Colégio Brasileiro de Reprodução Animal. Os dados foram analisados por ANOVA e o nível de significância de 5% foi utilizado. Não houve diferença significativa (média ± desvio padrão) no número de espermatozoides normais (CONT: 78,2 ± 15,1; CENT: 68,5±19,3 e SPERM: 75,8±11,5) nem no número de defeitos maiores (CONT:15,2±8,4; CENT:12,7±9,2 e SPERM:17,7±12,8) e menores (CONT: 15,8±10,9; CENT: 19±10,8 e SPERM: 14,2±8,5) entre os tratamentos (p>0,05). A integridade de membrana espermática foi similar (p>0,05) entre os tratamentos, onde a quantidade de espermatozoides com membrana rompida foi de 99%±1,3 para o grupo CONT; 85,3±31,6 para o CENT; 76,3±37 para o grupo SPERM. Diante do exposto, não houve influência do método de separação espermática nos parâmetros analisados