Signs of many diseases of body organs and systems are manifested in the oral cavity. Patients with blood disorders are characterized by prominent oral mucosal alterations. One of the most common symptoms includes increased mucosal bleeding, as well as vulnerability and impaired epithelialization of the oral mucosa. The clinical manifestations spectrum depends on the underlying disease severity. Secondary (fungal, herpes virus) infections complicate the diagnosis. Such patients require comprehensive physical and laboratory examination. Blood tests, as well as laboratory tests on other bodily fluids allow dentists to clarify the systemic disease diagnosis, and to provide proper topical treatment.

Представленный способ забора слезной жидкости для лабораторного исследования с помощью полосок Ширмера по сравнению с другими методами получения слезы отличается безопасностью, доступностью и осуществим в том числе у пациентов с недостаточностью слезопродукции. Цель валидации представленного способа забора слезной жидкости - документированное подтверждение правильности выбора способа забора биологической жидкости для конкретного применения в реальных условиях. В результате проведения валидации получены неопровержимые объективные свидетельства того, что требования для использования конкретного способа забора слезной жидкости с целью лабораторного исследования были выполнены. Полученные результаты испытаний удовлетворяли критериям правильности, сходимости и воспроизводимости. The presented method of collecting tear fluid for laboratory testing using Schirmer strips, compared with other methods of obtaining tears, is characterized by minimal trauma, safety and is feasible, including in patients with a pronounced deficiency of the aqueous part of the tear. This method is characterized by accessibility, is easily feasible, and expands the possibilities of conducting studies of tear fluid in patients with insufficient tear production. The purpose of the validation of the presented method of lacrimal fluid intake is a documented confirmation of the correctness of the choice of the method of biological fluid intake for a specific application in real conditions. As a result of the validation, irrefutable objective evidence was obtained that the requirements for using a specific method of collecting tear fluid for the purpose of laboratory testing were met. The test results obtained met the criteria of correctness, convergence and reproducibility.

Цель. Создание на основе совершенствования (применительно к использованию в судебно-медицинской практике) процедуры подготовки проб биологического материала аналитически более надежного, чем существующие, метода обнаружения и количественного определения азалептина по технологии газовой хроматографии с масс-селективным детектированием. Материал, реагентное и приборное обеспечение технологии исследования. Внутренние органы, волосы; азалептин (таблетки Борисовского завода медицинских препаратов, содержащие по 0,25 мг азалептина); метанол, изопропанол, хлороформ, этиловый эфир уксусной кислоты (этилацетат), гидроксид аммония (250 г/л квалификации х. ч.); наборы реагентов VetexQ (ИнтерЛабСервис, Россия) для экстракции токсических веществ из внутренних органов трупа по методу QuEChERS (США); газовый хроматограф Agilent 6890N Network GC System с массселективным детектором Agilent 5975C VL VSD (Agilent, США); сканирующий электронный микроскоп (СЭМ) LEO-1420 (Нидерланды); лазерный анализатор дисперсности MasterSizer 3000 (Malvern Panalylical, Великобритания). Результаты. Разработаны методы подготовки проб тканей внутренних органов и других биологических объектов - волос (ногтей) с использованием в качестве сорбентов углей марки ОУ-А и АС. Установлено, что для получения чистых извлечений из биологического материала в наибольшей мере подходит уголь марки АС, содержащий большое количество мезопор, способных сорбировать молекулы. Показано, что использование активированного угля марки ОУ-А и экспериментального образца угля марки АС для очистки проб от соединений, дающих ложноположительные результаты при определении азалептина, возможно при их модификации с помощью Na-САЦ. Экстракция азалептина из крови и мочи возможна благодаря модификации сорбционно-десорбционных свойств активированных углей под действием 8% (80 г/л) Na-САЦ. Выводы: 1. Разработаны методы подготовки проб тканей внутренних органов и других биологических объектов (волос, ногтей) на основе использования сорбционных свойств модифицированных углей. 2. Для получения более чистых извлечений из исследуемого биологического материала наиболее подходящим оказался уголь марки АС, содержащий большое количество мезопор, способных сорбировать молекулы. 3. Установлено, что использование активированного угля марки ОУ-А и экспериментального образца угля АС в качестве сорбента для очистки проб, полученных из биологических образцов, возможно в случае осуществления их модификации с помощью Na-САЦ. 4. При экстракции азалептина из биологических образцов оптимальные сорбционно-десорбционные свойства активированных углей проявляются при введении 8% Na-САЦ. 5. Использование усовершенствованной в ходе выполнения работы процедуры подготовки проб биологического материала к исследованию позволило повысить точность и надежность выполнения газохроматографического определения азалептина в пробах биологических объектов. Purpose. Creation, based on the improvement (as applied to the use in forensic practice), of a procedure for preparing samples of biological material that is analytically more reliable than the existing ones, a method for the detection and quantitative determination of azaleptin using gas chromatography technology with mass selective detection. Material, reagent and instrumentation of the research technology. Internal organs, hair; azaleptin (tablets of the Borisov Plant of Medical Preparations containing 0.25 mg of azaleptin); methanol, isopropanol, chloroform, ethyl acetate (ethyl acetate), ammonium hydroxide (250 g / l, chemically pure grade; VetexQ reagent kits (Interlab, Russia) for the extraction of toxic substances from the internal organs of a corpse using the QuEChERS method (USA Gas chromatograph Agilent 6890N Network GC System with mass selective detector Agilent 5975C VL VSD (Agilent, USA) Scanning electron microscope (SEM) LEO-1420 (Netherlands) Laser dispersion analyzer MasterSizer 3000 (Malvern Panalylical, UK). Results. Methods have been developed for the preparation of samples of tissues of internal organs and other biological objects - hair (nails) using OU-A and AS coals as sorbents. It has been established that coal of the AC grade, containing a large number of mesopores capable of absorbing molecules, is most suitable for obtaining pure extracts from biological material. It has been shown that the use of OU-A grade activated carbon and an experimental sample of AC grade coal for purification of samples from compounds that give false positive results in the determination of azaleptin is possible when they are modified with Na-SAC. Extraction of azaleptin from blood and urine is possible due to the modification of the sorption-desorption properties of activated carbons under the action of 8% (80 g / l) Na-SAC. Conclusions: 1. Methods have been developed for the preparation of samples of tissues of internal organs and other biological objects (hair, nails) based on the use of the sorption properties of modified coals. 2. To obtain purer extracts from the biological material under study, the most suitable was the AC grade coal containing a large number of mesopores capable of absorbing molecules. 3. It has been established that the use of OU-A activated carbon and an experimental sample of AC coal as a sorbent for cleaning samples obtained from biological samples is possible in cases of their modification using Na-SAC. 4. When extracting azaleptin from biological samples, the optimal sorption-desorption properties of activated carbons are manifested with the introduction of 8% Na-SAC. 5. The use of the procedure for preparing samples of biological material for research, improved during the execution of the work, made it possible to increase the accuracy and reliability of the gas chromatographic determination of azaleptin in samples of biological objects.