Resumen El objetivo de este estudio fue aplicar la tecnología de métodos combinados para elaborar una base dulce (BDT) de tamarillo (Cyphomandra betacea), así como evaluar su estabilidad durante el almacenamiento. La BDT fue preparada al pH natural de la fruta (3,72), con una actividad de agua (a w) reducida (0,901) mediante la adición de sacarosa, y adicionada con benzoato de sodio (0,1%) como antimicrobiano. La BDT se almacenó en refrigeración (4°C), protegida de la luz, y se evaluó cada tercer día durante 60 días determinando sus características fisicoquímicas (color, a w , pH y acidez titulable como ácido cítrico); antioxidantes (capacidad antioxidante, fenoles totales y antocianinas); y microbiológicas (bacterias mesófilas aerobias, mohos y levaduras). La BDT fue adicionada a yogurt natural para evaluar sensorialmente su aceptación general durante el almacenamiento; esta evaluación se llevó a cabo cada siete días durante 49 días. El tiempo de almacenamiento no tuvo efecto sobre la a w , el pH y la acidez de la BDT. Se observó un aumento en el cambio neto de color (de 0 a 4,9) y se registró disminución en los compuestos fenólicos totales (de 1,213 a 0,816 mg de ácido gálico/g BDT), en las antocianinas monoméricas totales (de 0,910 a 0,611 mg cianidina-3glucósido/g de BDT) y en la capacidad antioxidante (de 5,816 a 3,576 µmol Trolox/g BDT). Las cuentas de bacterias mesófilas aerobias, mohos y levaduras, aumentaron ligeramente durante el almacenamiento (de < 10 a 110 UFC/g, de < 10 a 380 UFC/g, y de < 10 a 83 UFC/g, respectivamente). En cuanto a los resultados de la evaluación sensorial, las calificaciones de la aceptación general no cambiaron significativamente (p > 0,05) durante el almacenamiento.
Tamarillo, or tree tomato, is native to South America. We examined the in vitro antioxidant and anti‐inflammatory properties of ethanolic extracts of skins, seeds, pulp, and whole tamarillo fruit in an LPS (lipopolysaccharide) induced RAW 264.7 mouse macrophage cell model. Chemically, tamarillo skin exhibited the highest total phenol (116.75 ± 2.78 mg gallic acid/g tamarillo), Trolox® equivalent antioxidant capacity (TEAC) (67,018.7 ± 2,539.9 meq Trolox®/g tamarillo) and ORAC values (4,684.9 ± 267.5 μM Trolox®/100 ml). The highest anthocyanin values (17.86 ± 0.85 mg/g) were associated with the seeds. MTT (3‐(4,5‐dimethylthiazol‐2‐yl)‐2,5‐diphenyltetrazolium bromide) assays were used to determine non‐toxic tamarillo extract doses and viability in RAW 264.7 cells. In the absence of LPS stimulation, tamarillo seeds and whole fruit, but not skin or pulp extracts, significantly induced NO formation (P < 0.05). In contrast, tamarillo skin, but not seeds, pulp, or whole tamarillo extracts significantly suppressed NO formation (P < 0.05) in the presence of LPS stimulation. These results suggest that the tamarillo fruit extracts modulate NO formation in the RAW 264.7 model and that these effects vary depending on the composition of the extract in question, such that seeds are net inducers of NO, while skins inhibit LPS‐induced NO formation.
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