Caracterización y evaluación de PGPRs sobre el crecimiento de plántulas de Dioscorea rotundata in vitro.

Abstract

El objetivo de esta investigación fue aislar y caracterizar rizobacterias promotoras de crecimiento vegetal (PGPRs, por sus siglas en inglés) nativas de la rizosfera en cultivos de Dioscorea rotundata de zonas productoras representativas del Caribe Colombiano como Montes de María, Sabanas Colinadas, Valle del Sinú. Además, evaluar el efecto de la inoculación de estas, a nivel de invernadero, sobre el crecimiento de plántulas in vitro de Dioscorea rotundata. Se determinaron características de promoción de crecimiento vegetal in vitro mediante la producción de auxinas por el método colorimétrico de Salkowsky y solubilización de fósforo. Las cepas fueron probadas a nivel invernadero en plántulas in vitro de Dioscorea rotundata, en las que se determinó variables de altura, longitud radicular, peso seco parte aérea y peso seco radicular. Todas las cepas presentaron la capacidad de producir auxinas y solubilizar fósforo. Se evidenció en invernadero un efecto positivo en los parámetros de crecimiento de plántulas después de 60 días de siembra, la mayoría de las cepas por zona generaron incrementos, principalmente en el peso seco radicular de las plántulas de Dioscorea rotundata, en comparación con el control sin inocular, destacándose Enterobacter cloacae DSC6 con un incremento significativo (p≤0,05) de 147%, Azotobacter vinelandii DVS9 con un 126%, Azotobacter vinelandii DCR11 con un 108% (p≤0,05), Brevibacillus laterosporus DSC19 con un 96%, Bacillus subtilis DSC82 con un 88% (p≤0,05), Azotobacter vinelandii DSC72 con un 54% y Pseudomonas denitrificans DVS10 con un 48%. Los resultados sugirieron que los microorganismos aislados de la rizosfera tienen potencial como biofertilizantes.

Azotobacter chroococcum y Azospirillum lipoferum como bioestimulantes en cultivo de Ipomoea batatas Lam.

“…Una posibilidad es el uso de bioinoculantes a base de bacterias promotoras de crecimiento vegetal (PGPRs, por sus siglas en inglés), los cuales pueden integrarse en las prácticas agrícolas y constituyen una herramienta prometedora en los sistemas integrados de manejo de cultivos (Di-Benedetto et al, 2017); además, generan beneficios como la fijación de nitrógeno, absorción de los nutrientes, promoción de crecimiento de ramas y raíces, control o supresión de enfermedades y mejoras en la estructura del suelo (Gupta, 2012;Dawwam et al, 2013;Armada, 2015;Altaf y Ahmad, 2017). Varios estudios han reportado el potencial de las PGPRs Azotobacter chroococcum y Azospirillum lipoferum, bacterias de vida libre, que se encuentran comúnmente en el suelo, el agua y la rizosfera, que de manera directa e indirecta facilitan el enraizamiento y crecimiento de las plantas (Sánchez y Pérez, 2018). En el caso de Azospirillum, se ha encontrado en espacios intracelulares en tejidos vasculares de tallos y raíces (Robson et al, 2015;Doncel et al, 2016) y han sido utilizadas como inoculantes agrícolas, debido a su capacidad para estimular el crecimiento de las plantas a través de la fijación de nitrógeno y la síntesis de Abstract Introduction.…”

Azospirillum brasilense and Solarized Manure on the Production and Phytochemical Quality of Tomato Fruits (Solanum lycopersicum L.)

“…The values indicate that Ab + M reached 115.11 mL compared to the control without Ab and/or manure or chemical fertilization, which yielded up to 69.16 mL-a difference of up to 60% (Table 3). Although no histological sections were made at the root level, we consider that Ab bacteria facilitate the rooting and growth of plants [50]. Azospirillum has been found in the intracellular spaces of vascular tissues of stems and roots [51,52] and has been used as an agricultural inoculant due to its ability to stimulate plant growth through nitrogen fixation and the synthesis of plant hormones [53].…”

Hongos asociados a la pudrición seca de tubérculos de ñame (Dioscorea rotundata Poir.) en Córdoba, Colombia

“…Las secuencias consenso se alinearon con secuencias referenciadas de la base de datos del GenBank mediante la herramienta BLASTn. El árbol filogenético se construyó con el software Mega 10 (Versión 10.0.5., State College, USA), se alinearon las secuencias con la herramienta MUSCLE, y se elaboró el árbol filogenético al utilizar el método de máxima verosimilitud, evaluado por medio del método Bootstrap con 1000 variaciones (Sánchez-López & Pérez-Pazos, 2018).…”