Ein SECM‐Detektionsmodus mit verbesserter Empfindlichkeit und lateraler Auflösung: Detektion von Galactosidaseaktivität mit Signalverstärkung durch Glucosedehydrogenase

Zhao, Chuan; Wittstock, Günther

doi:10.1002/ange.200454261

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“…396 Further options for optimization are the use of galactosidase as the label enzyme (avoidance of the air‐sensitive substrate p ‐aminophenyl phospate for ALP) and the use of catalytical signal enhancement by coupling a second enzymatic reaction (Figure 22) 334. 347 In this case, p ‐quinone imine, which is formed at the UME from p ‐aminophenol (PAP), acts as a cofactor for glucose dehydrogenase. In this reaction, PAP is regenerated and can be detected at the UME.…”

Section: Application Areas and Specific Requirementsmentioning

confidence: 99%

Scanning Electrochemical Microscopy for Direct Imaging of Reaction Rates

et al. 2007

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Not only in electrochemistry but also in biology and in membrane transport, localized processes at solid-liquid or liquid-liquid interfaces play an important role at defect sites, pores, or individual cells, but are difficult to characterize by integral investigation. Scanning electrochemical microscopy is suitable for such investigations. After two decades of development, this method is based on a solid theoretical foundation and a large number of demonstrated applications. It offers the possibility of directly imaging heterogeneous reaction rates and locally modifying substrates by electrochemically generated reagents. The applications range from classical electrochemical problems, such as the investigation of localized corrosion and electrocatalytic reactions in fuel cells, sensor surfaces, biochips, and microstructured analysis systems, to mass transport through synthetic membranes, skin and tissue, as well as intercellular communication processes. Moreover, processes can be studied that occur at liquid surfaces and liquid-liquid interfaces.

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Section: Application Areas and Specific Requirementsmentioning

confidence: 99%

Scanning Electrochemical Microscopy for Direct Imaging of Reaction Rates

et al. 2007

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“…À15 mol für murines Immunglobulin G. [346,396] Weiteres Optimierungspotenzial besteht im Einsatz des Enzyms Galactosidase (Vermeidung des luftempfindlichen Substrats paraAminophenylphosphat für ALP) und in der Nutzung einer katalytischen Nachverstärkung des Signals durch Ankopplung einer zweiten enzymatischen Reaktion (Abbildung 22). [334,347] In diesem Fall wirkt das an der UME aus pAminophenol (PAP) gebildete p-Chinonimin als Cofaktor für Glucosedehydrogenase. Dabei wird erneut PAP gebildet und kann an der UME detektiert werden.…”

Section: Enzymmarkierungenunclassified

Elektrochemische Rastermikroskopie zur direkten Abbildung von Reaktionsgeschwindigkeiten

Wittstock¹,

Burchardt²,

Pust³

et al. 2007

Angewandte Chemie

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Eine entscheidende Rolle in der Elektrochemie, aber auch in biologischen Systemen oder beim Transport durch Membranen, spielen lokale Prozesse an Fest‐flüssig‐Grenzflächen oder Flüssig‐flüssig‐Grenzflächen, die z. B. an Defektstellen, an Poren oder an einzelnen Zellen ablaufen und sich durch integrale Untersuchungsverfahren nur schwer erfassen lassen. Mit der elektrochemischen Rastermikroskopie steht eine Untersuchungsmethode für lokale Grenzflächenreaktionen zur Verfügung, die nach zwei Jahrzehnten Entwicklung eine solide theoretische Basis und eine große Zahl von Anwendungen aufweist. Sie bietet die Möglichkeit, Geschwindigkeiten heterogener Reaktionen direkt abzubilden und Oberflächen durch elektrochemisch erzeugte Reaktanten lokal zu modifizieren. Die Vielfalt der Anwendungen reicht von klassischen elektrochemischen Fragestellungen bei der Untersuchung lokaler Korrosionsphänomene und elektrokatalytischer Reaktionen in Brennstoffzellen, von Sensoroberflächen, Biochips und mikrostrukturierten Analysesystemen bis hin zum Massentransport durch synthetische Membranen, Haut und Gewebe sowie interzellulären Kommunikationsprozessen. Außerdem können Prozesse an Flüssigkeitsoberflächen oder an Flüssig‐flüssig‐Grenzflächen untersucht werden.

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“…The normalized current I T = i T /i T,Nthus decreases with increasing mediator concentration at such samples. Similar effects are common for the investigation of immobilized redox enzymes 49,50.…”

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