Some observations on the free-living stages of Ostertagia ostertagi, a stomach worm of cattle

Abstract

Outdoor observations were made on the rate of development of the free-living stages of O. ostertagi at different times of the year, and on the migratory activities and longevity of the larvae in faeces, on herbage and in soil.The effect of temperature on the rate of development of eggs and larvae in faeces, and the effect of temperature and humidity on the longevity of eggs and larvae when separated from faeces, were studied in the laboratory.The results of these observations are discussed in relation to translation (that is, the process whereby eggs in faeces become infective larvae on herbage available to the grazing animal) and to the transmission of infection in the field.I wish to thank Mr J. F. Michel for providing the infected faeces, and Mr D. A. Griffiths for technical assistance.

Controlling nematode infections in sheep: application of HACCP

“…Strongyle eggs can survive on pasture for more than 12 months (Rose 1961). Pre-existing worm burdens should be considered when assigning risk to pastures.…”

The influence of temperature on the development and survival of the pre-infective free-living stages of nematode parasites of sheep

“…This is perhaps most obvious in nematodes developing in cattle faeces where high moisture and low oxygen content delays development (Rose 1961;Young et al 1980). An excess of moisture was proposed as a possible explanation for the protracted persistence of unhatched eggs within sheep faeces on pasture over winter in New Zealand ).…”

Untersuchungen zur Migration und Translation von Oesophagostomum‐quadrispinulatum‐Larven aus dem Kot

“…Anhand von Graswaschproben wurden Larven iibenviegend bei hohen Umgebungsfeuchten auf der Vegetation festgestellt und daher eine Migration der Drittlarven von Ostertagiaspp. (ROGERS, 1940;FURMAN, 1994;DUNE, 1961;ROSE, 1961;KUTZER, 1967;GOLDENSTEIN et al, 1978;KOZLOV, 1985), Tricboshngylza spp. (ROGERS, 1940;CROFTON, 1948;DURIE, 1961;GOLDENSTEIN et al, 1978;ROSE und SMALL., 1985;CWINAN und WETCO'IT, 1986), Cooperia spp.…”

“…Durch die Persistenz von Drittlarven iiber extrem lange Zeitraume wird ein hohes Infektionspotential in der Umgebung des Wirtes etabliert und dadurch die Erhaltung und Propagation der Art gewahrleistet. Der Kot stellt dabei nicht nur ein Refugium gegenuber ungtinstigen Umweltbedingungen und Nahrungssubstrat fiir Erst-und Zweitlarven dar, sondern ist, wie anhand von Feldversuchen fiir Ostertgia ostertagi (ROSE, 1961), Ostertagia CirMmcinnCta (GIBSON und EVERETT, 1972;CALLINAN, 1978b), Cooperia onmpberu (ROSE, 1963), Tkicbostmngylus colnbnjhnis (GIBSON und EEm'IT, 1967, TricbostrongyIz4s axei (CALLINAN, 1978a, Hyortmngyhs irbidw (ROSE und SMALL., 1982), 0. dentatma (ROSE und S u m , 1980) Magen-Darm-Strongyliden (DUNE, 1961) sowie fir Arten kleiner und grofiber Pferdestrongyliden (OGBOURNE, 1972(OGBOURNE, , 1973ENGLISH, 1979a;HUTCHINSON et al, 1989) Als wesentlich ftk die Ausbreitung von 0. quudrispindutum ist aber die Migation der Drittlarven anzusehen, die sich, durch die Umgebungsfeuchte gefordert, weit vom Kot entfernen konnen und damit dem Schwein zugbglich werden. Whrend die meisten Larven dabei eine Distanz von lediglich 10-80 cm uberwinden und somit in der Lage sind, bei sich verschlechternden Umweltbedingungen den Kot schnell wieder zu erreichen, breitet sich bei giinstiger Abiotik ein Teil der Drittlarven nachweislich bis zu einer Distanz von 150 cm und sehr wahrscheinlich sogar noch welter aus.…”