A complete and efficient regeneration protocol was developed for Vanilla planifolia ‘Andrews’, an endangered orchid species that represents an important crop in several tropical countries. Axillary buds excised from the first to the eighth node, considering the first to fourth nodes as “young” (zone 1) and the fifth to eighth as “mature” (zone 2), were cultured on Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 5.73, 7.64, 9.55, or 11.46 μm 6-benzylaminopurine (BA) for shoot induction and in combination with 4.45 μm naphthalene acetic acid (NAA) to induce multiple shoot proliferation. Cytokinin concentration and bud position in the stem had a significant effect on the number of shoots regenerated. The greatest shoot formation per explant, for the two tested zones, was obtained with 9.55 μm BA on MS medium supplemented with 100 mg·L−1 myoinositol, 150 mg·L−1 citric acid, 100 mg·L−1 ascorbic acid, and 20 g·L−1 sucrose. Young buds from zone 1 were able to form an average of 18.5 ± 2.4 shoots per explant, whereas buds from zone 2 induced a maximum of 11.0 ± 1.0 shoots per explant. Plants of 2 to 3 cm height developed a root system in half-strength MS medium supplemented with 0.44 μm NAA and, once they reached 5 cm height on average, were transferred to greenhouse conditions for their acclimatization where a 100% rate survival was achieved. The optimal use of both young and mature buds from each mother plant to induce adventitious shoots permitted a marked increase in the number of shoots per explant. By using all buds from the upper stem part (zone 1 + zone 2) and subculturing every 90 d, the multiplication rate was 1.1 to 1.86 × 105 shoots per bud per year.

No abstract

Anturio (Anthurium andreanum L.) es una especie ornamental altamente apreciada en el trópico mexicano y a nivel mundial, como flor de especialidad con rendimientos económicos bastante favorables, pero su propagación tradicional es lenta desde la germinación hasta la floración, influenciada por la variación genética y la baja tasa anual de obtención de hijuelos (3 a 4 por año). El cultivo de tejidos vegetales in vitro constituye una alternativa para la producción masiva de plantas, aunada a la garantía de homogeneidad genética cuando se parte de explantes apropiados. En esta investigación, se establecieron las condiciones in vitro para la inducción de la proliferación de brotes múltiples en anturio, y se caracterizó la capacidad de respuesta de los cultivares 'Kalapana' y 'Midori'. La mejor brotación en la fase de establecimiento, se encontró al utilizar como explantes a yemas axilares de 2-3 mm de diámetro, que produjeron de cinco a ocho brotes por explante en medio líquido modificado de Murashige y Skoog a 37.5 % (p/v) suplementado con 0.8 mg L-1 de BAP en agitación rotatoria. Los brotes desarrollaron plántulas, previa elongación del tallo con AG3 0.5 mg L-1, de donde se extrajeron miniestacas que contenían una yema axilar, que en posición horizontal sobre medio sólido modificado de MS 37.5 % y 0.2 mg L-1 de BAP, rindieron la mayor proliferación de brotes múltiples por organogénesis directa. La máxima regeneración de brotes en la fase de multiplicación, tanto para 'Midori' (10) como para ‘Kalapana’ (15), se obtuvo en el medio de cultivo que contenía 0.8 mg L-1 de BAP solidificado con Phytagel® 2 g L-1 , a los 75 y 90 días, respectivamente. Los brotes formaron raíces en medio sólido modificado de MS 50% adicionado con ANA 3.0 mg L-1. Las plantas transferidas a condiciones de invernadero presentaron 100 % de aclimatación al usar como sustrato al musgo turboso.