psychrotrophes ont été dénombrés uniquement après agitation par Ultra-turrax. Tous les ensemencements ont été effectués à l'aide de l'ensemenceur Spiral. Avec un inoculum de 0,1 ml de lait dans les cellules, le coefficient de corrélation entre le logarithme du nombre d'UFC/ml (FTAS) et le temps de détection TD 30 oC est de -0,822 et l'écart type résiduel de la régression Référence sur TD 30 oC de 0,386 log (UFC/ml). Cette précision se dégrade de façon significative avec un inoculum de 1 ml de lait [Sy,x = 0,452 log (UFC/ml)] ou si les numérations ont été effectuées après une agitation par Ultra-turrax [Sy,x = 0,467 log (UFC/ml)]. Le coefficient de corrélation entre le logarithme du nombre de coliformes et le temps de détection sur Coliform Broth TD Coli est de -0,823 et l'écart type rési-duel de la régression Référence sur TD Coli de 0,424 log (UFC/ml). Pour la flore psychrotrophe, ces paramètres sont respectivement de -0,667 et de 0,640 log (UFC/ml) pour la régression entre le nombre d'UFC/ml (en log) et le temps de détection TD CV et respectivement de -0,945 et de 0,287 log (UFC/ml) pour la régression entre le nombre d'UFC/ml (en log) et le temps de détection TD 10 oC. Quel que soit le groupe microbien, l'écart type relatif de répétabilité des temps de détection (en h) est faible (2-4%) et constant à tous les niveaux de contamination du lait. Par contre, après conversion en UFC/ml à partir de la pente de la droite de calibrage, l'écart type de répétabilité augmente quand le niveau de contamination du lait baisse. Pour la flore totale, l'écart type relatif géomé-trique de répétabilité est en moyenne de 35,9% et dépasse 40% au-dessous de 10 5 UFC/ml.
To cite this version:D Rongvaux-Gaïda, A Peroz, B Verdier, C Piton. Estimation de la qualité bactériologique du lait cru par microrespirométrie. Le Lait, INRA Editions, 1990, 70 (1), pp.23-36.
(Reçu le 7 mars 1991; accepté le 6 décembre 1991) Résumé -Cent vingt échantillons de lait cru ont été prélevés dans les citernes de ramassage de 4 grandes entreprises laitières, dès leur arrivée au quai. Après agitation pendant 30 s à l'aide d'un Ultraturrax, les échantillons ont été soumis au dénombrement de la flore psychrotrophe à l'aide du système «Spiral». L'activité enzymatique de la cytochrome oxydase a été déterminée en double après une incubation préliminaire des échantillons : 7 h à 30 oC ou 48 h à 4 oC ou 48 h à 4 "C suivies d'une incubation supplémentairetétraméthyl-p-phénylène diamine dihydrochloride) par la cytochrome oxydase se traduit par l'apparition d'une coloration bleu-violette, dont l'intensité a été évaluée, soit visuellement par comparaison à une gamme étalon, soit à l'aide d'un chromamètre. Les intensités de coloration mesurées par les 2 modes de lecture sont très corrélées (r = 0,98). Les écarts types relatifs géométriques de répétabilité (en % UFC/ml) sont dans tous les cas inférieurs à 10% pour la lecture visuelle et la mesure colorimétrique. Pour les échantillons de lait analysés après une préincubation de 7 h à 30 "C, il n'existe pas de corrélation satisfaisante entre l'intensité de coloration et le niveau de la flore psychrotrophe initiale. Cependant, après 48 h d'incubation à 4 oC, il apparaît une relation linéaire sur toute la gamme de concentration des échantillons analysés (entre 10 3 et 10 8 UFC/ml); l'écart type résiduel de la régression est de 0,524 log UFC/ml dans le cas d'une lecture visuelle, contre 0,534 log UFC/ml dans le cas d'une lecture au colorimètre. Une incubation supplémentaire de 7 h à 30 "C n'améliore pas la précision d'estimation du dosage : l'écart type résiduel est alors de 0,523 log UFC/ml dans le cas d'une lecture visuelle.
Lait (1990) l'ensemenceur Spiral. Pour la flore totale, l'équation de la régression Référence sur Petrifilm est log (Réf) = 0,991 x log (Petrifilm) + 0,021, avec un coefficient de corrélation de 0,985 et un écart type résiduel de 0,128 log (UFC/ml); la pente et l'ordonnée à l'origine de la droite ne sont pas significativement différentes respectivement de 1,000 et de 0,000 au seuil de 5%. Pour les bactéries coliformes, l'équation de la régression est log (Réf) = 0,891 log (Petrifilm) + 0,471, avec un coefficient de corrélation de 0,934 et un écart type résiduel de 0,250 log (UFC/ml); la pente et l'ordonnée à l'origine de la droite sont significativement différentes respectivement de 1,000 et de 0,000 au seuil de 1% et le Petrifilm VRB sous-estime les nombres de bactéries coliformes en moyenne de 37,2%. Enfin, pour la flore psychrotrophe, l'équation de la régression Référence 7°C-10 j sur Petrifilm SM 21°C-48 h est log (Ref) = 1,029 x log (Petrifilm) -0,258, avec un coefficient de corrélation de 0,985 et un écart type résiduel de 0,145 log (UFC/ml); la pente n'est pas significativement différente de 1,000 au seuil de 5% mais les nombres d'UFC/ml obtenus sur Petrifilm sont en moyenne supérieurs de 26% aux nombres de bactéries psychrotrophes obtenus selon la technique de référence. La justesse de cette méthode rapide de numération de la flore psychrotrophe sur Petrifilm semble influencée par la nature de la flore microbienne du lait. De nombreux travaux ont déjà clairement démontré que cette technique pré-sente également une relation étroite avec les méthodes de référence, avec cependant une sous-estimation du nombre de colonies pour la flore totale (tableaux 1 et Il). Les coefficients de corrélation avec la technique de référence sont supérieurs à 0,95 dans le cas du Petrifilm SM ou à 0,93 dans le cas du Petrifilm VRB. Mais le plus souvent, les auteurs ne précisent pas l'ensemble des paramètres de la justesse (précision d'estimation et exactitude de calibrage); or, la valeur du coefficient de corrélation est largement influencée par l'éten-due des niveaux de contamination des échantillons analysés.Par ailleurs, Bishop et Juan (1988)
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