El árbol de eucalipto (E. urophylla y E. grandis) es un recurso importante, debido a su aprovechamiento industrial en la obtención de celulosa y hemicelulosa para la fabricación de papel en varias partes del mundo en general y en particular en el sureste de México. Varios alcances biotecnológicos han sido desarrollados para solucionar las dificultades de variabilidad genética en propagación por semilla que presentan las especies de eucalipto. Para ello, resulta necesario el estudio de diversas estrategias de micropropagación que permitan la obtención y multiplicación de clones de eucalipto. Por lo que el objetivo de este trabajo fue establecer la tecnología para la micropropagación clonal in vitro de genotipos seleccionados, con el fin de obtener plantas de alta calidad destinadas a las plantaciones o a huertos clonales en el sureste de México. Para el establecimiento de los explantes a condiciones in vitro se evaluaron tiempos de desinfestación de los explantes, realizando la combinación de tres niveles de desinfección con antibiótico (terramicina 40 mg/l00 ml) y con fungicida (cuprimicin 150 mg/100 ml) a 0, 10 y 30 minutos. Obteniéndose hasta un 90 % de cultivos libres de contaminación. Además se evaluó la multiplicación de brotes, la formación de callo y enraizamiento para ambas especies, combinando tres niveles de benziladenina (0.0, 1.0 y 3.0 mg L-1) y de ácido naftalen acético (0.0, 1.0 y 3.0 mg L-1) en un medio de cultivo Gamborg B5. Se obtuvo hasta 9 brotes por explante cultivados y una media de 5.5 raíces por explante, combinando 3 mg L-1 de benziladenina y 1.0 y 3.0 mg L-1 de ácido naftalen acético. Los protocolos para aclimatación de plantas fueron también establecidos.

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RESUMENSe evaluó la respuesta morfogénica a partir de embriones cigóticos cultivados in vitro de semilla almacenada (un año) de Pseudotsuga menziesii var. glauca recolectada en Tlaxcala. Las semillas fueron desinfestadas con detergente y H 2 O 2 (3 % v/v) durante 48 h en agitación a 50 rpm, cultivadas en el medio de Murashige y Skoog (1962) sin reguladores. La germinación ocurrió después de siete días y posteriormente subcultivados a un medio MS con 2,4-D (3 mg·L -1 ) y BA (1 mg·L -1 ). Con los callos obtenidos en un medio HS se evaluaron tres concentraciones de ABA para promover formación de estructuras embrionarias, presentándose el mejor tratamiento con concentración de 10.0 mg·L -1 (P<.0001). El mejor desarrollo de plántulas se presentó empleando un medio Murashige y Skoog (1962) con sacarosa al 6 %. Se usaron micorrizas para mejor adaptación de plántulas a suelo. No hubo formación de raíces. ABSTRACT L-1 (P<.0001). The best plantlet development occurred using Murashige and Skoog (1962) medium with 6% sucrose. Mycorrhizae were used to improve plantlet adaptation to soil. No roots formed.PALABRAS CLAVE: Embrión, callo, plántula, reguladores del crecimiento.

Brotes adventicios de Agave angustifolia se obtuvieron in vitro a partir de segmentos de médula de tallo. Para inducir la formación de raíces, los brotes de aproximadamente de 3.5 a 4 cm de longitud, se transfirieron a recipientes de 145 mL que contenían 20 mL de diferentes medios de cultivo constituidos por 1) 0.4 mg L-1 de tiamina, 100 mg L-1 de mio-inositol, 30 g L-1 de sacarosa; 2) 50 %, 75 % y 100 % de la concentración de las sales inorgánicas de Murashige y Skoog (1962), y 3) 0, 0.25, 0.5, 0.75 y 1.0 mg L-1 del ácido indolbutírico (AIB). Todos los brotes formaron raíces, aún aquéllos que se establecieron en el medio de cultivo sin AIB. Los brotes establecidos en el medio con las sales a 100 % de concentración y sin AIB, formaron 4.2 raíces en 14 d y 5.8 hojas en promedio. El número de raíces por brote aumentó en relación a la concentración creciente del AIB y la concentración decreciente de las sales inorgánicas en el medio. Los brotes que se desarrollaron en el medio con 75 % de sales y 0.75 mg L-1 de AIB enraizaron en 7 d, y formaron 8.6 raíces y 6.4 hojas, en promedio.

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