Stevia rebaudiana produces steviol glycosides (GSt) 300 times sweeter higher than sugar cane. The problem is that the global demand is increasing and the agricultural production is insufficient. Is reported that Hydroponic cultivation and high irradiance increase the yield of S. rebaudiana and the production of steviol glycosides. This is due to the management and control of nutrition and the effect of light on the photosynthetic system, respectively. Therefore, the objective was to evaluate the effect on three levels of PFD (440.8, 383.9 and 273.2 μmol m-2 s) efficiency of photosystem PSII, and production of glycosides of steviol in S. rebaudiana var. Morita II at 40 and 90 days, using a NFT hydroponic culture (Nutrient Film Technique). The highest photosynthetic rate was recorded at 440.8 μmol m-2 s with 15.4 and 17.72 ppm CO2 min-1 g at 40 and 90 of culture days respectively and the higher content of steviol glycosides, with this same PFD, the lowest fluorescence emission occurred in PSII, while with low luminosity, the absorbed energy was harnessed more efficiently by the PSIIRC. The photosynthesis and production of steviol glycosides in S. rebaudiana were affected by level of PFD and culture time in a hydroponic system.

No abstract

Las plantas del género Physalis son reconocidas en México por sus propiedades nutricionales y medicinales, pero solo se utilizan 24% de las 70 especies existentes. En Puebla, México, una especie de este género que crece de forma silvestre, y la cual no se ha identificado, produce frutos que son consumidos por la población local. El objetivo de la investigación fue identificar a esta nueva especie y establecer un método de propagación y cultivo, después de comprobar su utilidad alimentaria. Un estudio taxonómico y técnicas de cultivo in vitro e hidropónicas se aplicaron para identificar, propagar y cultivar esta especie. Una germinación in vitro de las semillas de frutos maduros se realizó en MS al 50%. El porcentaje de germinación fue de 79% a 12 d de cultivo. Nódulos de plántulas que se desarrollaron in vitro se utilizaron para inducir brotes múltiples en un medio MS suplementado con BAP (6- bencilaminopurina) en concentraciones de 0.2, 0.5, 1.0, 1.5 y 2.0 mg L-1 y un factor kin (Kinetina) con IBA (ácido indol butírico) de 0.2-2.0 mg L-1. Hipocótilos y cotiledones se usaron para inducir organogénesis con NAA (ácido naftaleno acético) y BAP (0.5-1.0 mg L-1) agregados al medio MS. Con 1.5 mg L-1 de BAP y 0.5 mg L-1 de IBA, se obtuvo una brotación múltiple de 100%, así como tallos y raíces con 1 mg L-1 de BAP y 1 mg L-1 de NAA. La formación de las raíces se indujo con IAA (ácido indol acético), NAA y IBA de 0.2, 0.5, 1.0, 1.5 y 2.0 mg L-1. La mejor respuesta en enraizamiento fue con 0.5 mg L-1 de IBA. Las plántulas se aclimataron durante 49 d; el porcentaje de sobrevivencia fue de 100%. El estudio taxonómico identificó a esta planta como Physalis aff rydbergii Fernald. Por medio de micropropagación es posible propagar especies de interés alimentario y medicinal en menor tiempo que con los métodos convencionales.

Problemática para el abastecimiento de taxol a partir de fuentes naturales.2.2.6 Fuentes alternas para la obtención y producción de taxol. 2.3. Cultivo in vitro de vegetales. 2.3.1. Establecimiento de cultivos vegetales. 2.3.2. Establecimiento de los cultivos de callo. 2.3.3. Establecimiento de los cultivos de células en suspensión. 2.3.4. Estrategias biotecnológicas para incrementar el metabolismo secundario en los cultivos in vitro. 2.3.5. Estimulación. II Pág. 2.3.6. Inmovilización celular. 2.3.7. Cultivo in vitro de diferentes especies del género Taxus. 2.4. Antecedentes generales sobre Taxus globosa Schltdl. 2.4.1. Descripción Botánica de T. globosa. 2.4.2. Características distintivas. 2.4.3. Biología y hábitat. 2.4.4. Distribución geográfica en México. 2.4.5. Aspectos fitoquímicos y actividad biológica de T. globosa. 2.4.6. Cultivo in vitro de T. globosa. 3. PLANTAMENTO DEL PROBLEMA Y JUSTIFICACIÓN 4. HIPÓTESIS 5. OBJETIVOS GENERALES 6. OBJETIVOS PARTICULARES 7. MATERIAL Y MÉTODOS 7.1. Establecimiento de los cultivos in vitro de T. globosa. 7.1.1. Inducción y establecimientos de los cultivos de callo. 7.1.2. Crecimiento celular y producción de taxanos en callos de T.globosa. 7.2. Establecimiento de cultivos de células en suspensión de T. globosa. 7.3. Determinación del tamaño de inóculo.7.4. Efecto del jasmonato de metilo (MeJ) en la estimulación de la producción de taxol y taxanos relacionados, en los cultivos tipo lote de células en suspensión de T. globosa.7.5. Evaluación del efecto del calcio (Ca 2+ ) y jasmonato de metilo (MeJ) sobre la producción de taxol y taxanos relacionados en cultivos tipo lote en dos fases, de células en suspensión de T. globosa. III Pág.7.6. Efecto de la inmovilización celular en los cultivos tipo lote en dos fases de células de T. globosa. 7.7. Metodología química y análisis cromatográfico. 7.7.1. Extracción de taxanos a partir de biomasa. 7.7.2. Extracción de taxanos a partir del medio de cultivo. 7.8. Identificación y cuantificación de taxanos por Cromatografía de Líquidos de Alta Resolución (CLAR). 7.9. Estimación de consumo de carbohidratos mediante CLAR.