Fünf-oder sechsgliedrige cyclische Ethereinheiten sind Strukturmotive vieler biologisch aktiver Naturstoffe. Beispiele sind die in Abbildung 1 A gezeigten Polyketide aus Bakterien und Schwämmen sowie viele Dinoflagellatentoxine. Da solche Heterocyclen wichtige pharmakologische Determinanten sind, war das Verständnis, wie cyclische Ether in der Natur [1] und durch stereoselektive Synthese erzeugt werden, Motivation zahlreicher Arbeiten.[2] Recht detailliert wurde die Biosynthese von Polyether-Ionophoren untersucht, [3] die über bemerkenswerte Cyclisierungskaskaden durch freistehende Epoxidhydrolasen maturiert werden. Da diese Enzyme jedoch komplexe Substrate während des PostPolyketidsynthase(PKS-)Abschnitts der Biosynthese umsetzen, ist ihre Entwicklung zu allgemeineren Hilfsmitteln in der chemoenzymatischen Synthese vermutlich schwierig.Viele Polyketide, die Produkte einer als trans-Acyltransferase (trans-AT-PKS) [4] [6] Für diese PKS-Komponente, provisorisch als Pyransynthase(PS)-Domäne bezeichnet, [6c] wurde eine Ringschlussbildung über Oxakonjugat-Cyclisierung als Teil der in Abbildung 1 B gezeigten Reaktionsfolge vorgeschlagen.[6a,c] Alle bekannten Module dieses Typs haben die gleiche Gesamtarchitektur, was auf eine allgemeine biosynthetische Strategie schließen lässt, über die PKS cyclische und hinsichtlich Ringgrçße, Stereochemie und Substitutionsmuster diverse Einheiten generieren kçnnen.Zur Untersuchung der Funktion dieser Domänen exprimierten wir die PS des Biosynthesewegs für Pederin (1) aus einem bisher nicht kultivierbaren bakteriellen Pseudomonassp.-Symbionten in Paederus-spp.-Kurzflügelkäfern.[6a, 7] 1 ist ein hochwirksames Zytotoxin und blasenbildendes Dermatotoxin, das von den Käfern zur chemischen Verteidigung eingesetzt wird.[8] Für die PS wurde postuliert, dass sie an der Erzeugung der çstlichen Tetrahydropyran(THP)-Einheit mit anti-Substitutionsmuster an den a-Positionen der Etherfunktion beteiligt ist.[6a] Die Domänengrenzen wurden durch Alignment mit anderen Homologen, einschließlich DH-Domänen, bestimmt (Abbildung S1 der Hintergrundinformationen). Nach Polymerasekettenreaktions(PCR)-Amplifizierung und Klonierung in pET29a wurde die PS exprimiert und als C-terminal His 6 -markiertes Protein aufgereinigt (Abbildung S3-S5 der Hintergrundinformationen). Als Testsubstrate synthetisierten wir Thioester 6 und 7 sowie Standards für die mçglichen Produkte 8 und 9 über die in Schema 1 gezeigten Routen. Diese Verbindungen enthalten N-Acetylcysteaminthioester(SNAC)-Einheiten als vereinfachte Surrogate der ACP-gebundenen 4'-Phosphopantetheinylthioester in der Polyketidbiosynthese. Die E-konfigurierte Doppelbindung des natürlichen Substrats wurde auf Grundlage des Stereospezifitätsmotivs der KR innerhalb desselben Moduls angenommen. Dieses Motiv korreliert normalerweise mit der Olefinkonfiguration nach der Dehydratisierung. [9] HPLC-(Abbildung 2) und NMR-spektroskopische Analysen zeigten vernachlässigbare spontane Ringbildung der konjugierten Thioester.Enzymassays wurden durch Inkubation von 6 oder 7...