In vitro PROPAGATION OF Sprekelia formosissima Herbert., A WILD PLANT WITH ORNAMENTAL POTENTIAL

Abstract

Vegetative propagation of Sprekelia (Sprekelia formosissima Herbert.) in natural conditions is limited because it produces only one bulb per year or none. The objective of this research was to generate an in vitro propagation protocol for this species to increase its commercial propagation rate without extracting the species from its natural habitat. Bulbs of 4 to 5 cm in diameter were used as disinfested donor explant material; 1 cm2 explants were obtained from the cataphyll leaves with and without a portion of basal disc; these explants were established in MS medium supplemented with 8.87 μM of N6 benzyl adenine (BA) and 0.98 μM of indole-3- butyric acid (IBA). For shoot multiplication, bulblets obtained from the previous phase were used as explants and cultivated in MS medium with 2.5, 5, 10, 15 and 20 μM of BA combined with IBA at a 10:1 ratio (BA: IBA). Shoots obtained from multiplication were established in MS medium supplemented with 1, 2, 3, 4, and 5 % (w/v) sucrose to promote growth. Bulblets were rooted in MS medium supplemented with 0, 0.49, 0.98, 1.96, 3.93 and 7.8 μM of IBA. Once roots formed, they were transferred to soil to assess their acclimation. We obtained 89.1 % of aseptic explants, of which 86 % formed two shoots on the average. Multiplication of shoots increased as BA concentration increased in culture medium, and the best results (75 % of bulblets with shoots, 2.66 shoots per bulblet and 2.0 mm diameter shoots) were obtained with 20 μM BA. The best bulb growth in diameter (4.2 mm) and number of bulblet leaves (3.5) was obtained with 5 % sucrose. The use of 0.98 μM IBA resulted in greater rooting percentage (93.7) and number of roots per bulblet (2.0), which were 2.4 cm long on average. Up to 83 % of the bulblets survived acclimation. This protocol to micropropagate Sprekelia formosissima allowed the production of at least 96 bulblets from one mother bulb in a six months period of in vitro culture.

Micropropagación del lirio amazónico (Eucharis grandiflora Planch. & Linden) mediante organogénesis directa

“…Pugsley fue de 60 días (Santos, Fidalgo, Santos, & Salema, 2002). El incremento en el desarrollo de los brotes relacionado con el contenido de sacarosa en el medio de cultivo es atribuible a la gran disponibilidad de moléculas carbonadas para producir nuevos componentes celulares (Cázarez-Prado et al, 2010), y es por eso que los carbohidratos juegan un papel muy importante durante la propagación in vitro, como una fuente de carbono, así también como un agente osmótico (George, Hall, & De Klerk, 2008). No obstante, y en concordancia con este experimento, Al-Khateeb ( 2008) menciona que los carbohidratos en altas concentraciones pueden llegar a inhibir el desarrollo de la parte aérea de las plántulas debido a un elevado potencial osmótico, el cual interfiere con la absorción de nutrimentos (Siwach, Grover, & Gill, 2011).…”

“…El 80% de los explantes generaron nuevos brotes adventicios. Estos resultados coinciden con lo reportado por Cázarez-Prado et al (2010) y Hong & Lee (2012), quienes observaron la generación de nuevos brotes en esta región de los explantes. Cázarez-Prado et al (2010) también mencionan que cuando las escamas no presentan el fragmento del disco basal no se presenta brotación y sólo se hinchan.…”

“…Resultados similares encontraron Cázarez-Prado et al (2010) quienes observaron en Sprekelia formosissima (L.) Herb. que una concentración entre 40 y 50 g•L -1 de sacarosa promueve un mayor vigor de los brotes expresado en un diámetro de bulbo más grande y un mayor número de hojas por brote.…”

“…& Linden con y sin la adición de AIB al medio de cultivo, además, mencionan que con el uso de 0.4 mg•L -1 de AIB es posible obtener plántulas de muy buena calidad para ser transferidas al suelo. Por el contrario, en otras especies como Sprekelia formosissima (L.) Herb., Cázarez-Prado et al (2010) reportan haber obtenido un porcentaje de enraizamiento del 56.25% sin la adición de auxinas al medio de cultivo. Hasegawa, Takigawa, & Tokuzumi (1995) reportan haber obtenido raíces en plántulas de Eucharis grandiflora Planch.…”