The article presents the results of studies of fattening and meat qualities of young white pigs of different white breeds of different intensity of formation (Δt) in early ontogeny, biochemical parameters of blood serum (aspartate aminotransferase activity, alanine aminotransferase, alkaline transferase, alkaline phosphatase. It is established that according to the main indicators of fattening and meat qualities (age of reaching live weight of 100 kg, days; thickness of the sleeve at the level of 6-7 thoracic vertebrae, mm; length of chilled carcass, mm) young pigs of the controlled herd belong to the first class and class elite, and serum biochemical parameters are consistent with the physiological norm of clinically healthy animals. Taking into account the class of distribution by intensity of formation (Δt), a significant difference was established between animals of I (Δt = 0.795–0.832) and III (Δt = 0.660–0.703) groups on the average daily gain of live weight and age of reaching live weight of 100 kg. The relationship between the biochemical parameters of serum, fattening and meat characteristics of young pigs ranges from -0.250 to +0.385 and is unlikely. We offer in breeding and breeding work, along with the traditional methods of evaluation and selection of high-yielding animals use the method of evaluation and breeding indices.

Досліджено показники відтворювальних якостей свиноматок великої білої породи, зважаючи на їхню експлуатаційну цінність, розраховано рівень дискретності зазначеної групи ознак та економіч-ну ефективність результатів експерименту. Дослідження проведено в умовах племінного репродук-тора з розведення свиней великої білої породи СТОВ «Дружба-Казначеївка» Дніпропетровської обла-сті та лабораторії тваринництва Державної установи Інститут зернових культур НААН. Оцінку свиноматок великої білої породи за основними показниками рівня адаптації та відтворювальних яко-стей по групі (S) та сукупності загалом (σ) проводили, зважаючи на такі кількісні ознаки: трива-лість життя, міс., тривалість племінного використання, одержано опоросів (S1, σ1), одержано по-росят усього, гол. (S2, σ2), одержано живих поросят, гол. (S3, σ3), багатоплідність гол. (S4, σ4), маса гнізда на час відлучення у віці 28 діб, кг (S5, σ5), збереженість, %, тривалість міжопоросного періоду, діб, кількість непродуктивних діб з розрахунку на один опорос. Експлуатаційну цінність тварин ос-новного стада досліджували за методикою Коряжнова Е. В. (1985), рівень дискретності (D) – Се-ромолота В. В., Святченко С. И. (1984). Біометричну обробку одержаних результатів досліджень проводили за методикою Г. Ф. Лакіна (1990). Встановлено, що свиноматки великої білої породи під-контрольного стада за основними показниками відтворювальних якостей (багатоплідність, гол.; маса гнізда на час відлучення у віці 28 діб, кг) відповідають мінімальним вимогам І класу та класу еліта. Достовірну різницю між групами тварин категорій «висока експлуатаційна цінність» та «низька експлуатаційна цінність» встановлено за показниками «тривалість життя, міс.» (29,9 міс., td=13,71), «тривалість племінного використання, міс.» (29,6 міс., td=14,50), «одержано опоросів» (5,7 опоросів, td=14,50), «одержано поросят усього, гол.» (70,5 гол., td=13,85), «одержано живих поросят, гол.» (67,7 гол., td=20,83), «багатоплідність, гол.» (3,3 гол., td=10,31), «маса гнізда на час відлучення у віці 28 діб (6,5 кг, td=2,55). Коефіцієнт дискретності (D) ознак відтворювальних якос-тей свиноматок різної експлуатаційної цінності коливався в межах від 0,765 до 0,992. Максимальну прибавку додаткової продукції за показником «маса гнізда на час відлучення у віці 28 діб, кг» одер-жано від свиноматок категорії «висока експлуатаційна цінність» – 6,03 %.

Висвітлено сучасне розуміння ефективності новітніх методів біотехнології відтворення свиней, які спрямовані на зменшення впливу негативних факторів промислового свинарства. Проаналізовано вплив стрес- факторів на репродуктивну здатність свиней та визначені ефективні способи за-побігання гальмуванню відтворювальної функції. Встановлено, що отримання високопродуктивних нащадків розпочинається з формування біологічно повноцінних гамет і нормального їх злиття, яке досягається завдяки застосуванню методу штучного осіменіння. Виявлено, що використання внутрішньоматкового методу дає змогу осіменяти свиноматок малими спермодозами, збільшуючи при цьому кількість запліднених свиноматок (відсоток заплідненості). З метою довготривалого зберігання генофонду високоцінних кнурів-плідників використовують метод кріоконсервації сперміїв. Успіхи від використання цього методу насамперед залежать від складу розріджувачів та програм заморожування, де перспективним залишається використання спермальної плазми та кріопротек-торів нового покоління. З’ясовано, що ефективна інтенсифікація відтворної здатності свиней мож-лива лише в разі застосуванні біотехнологічних прийомів ‒ стимуляції й синхронізації охоти та ову-ляції у свиноматок, що базуються на закономірностях зміни гормонального профілю залежно від їх фізіологічного стану. Для цього використовують біологічно активні речовини та фармакологічні засоби (гормональні препарати та комплекси вітамінів). Встановлено, що для забезпечення ритміч-ності виробництва свинини через синхронізацію опоросів використовують простагландини. Викори-стання методів синхронізації опоросів дозволяє, без шкоди для поросят і свиноматок, регулювати тривалість поросності, скоротити кількість мертвонародженого молодняка, зменшити вікові розбіжності між ними, витримувати крок ритму виробництва та звести до мінімуму трудові вит-рати. Визначено, що раннє та своєчасне відлучення поросят дає можливість підвищити інтенсив-ність використання свиноматок, знизити виснаженість організму та уникнути затримки статевої охоти. З метою зниження негативних факторів у період відлучення перспективним є використання підгодівлі поросят вітамінами антиоксидантної дії (вітаміни А,Е,С) та Селеном у вигляді кормових добавок, що підвищує функціональний стан печінки, резистентність організму та в подальшому скорочує період їх вирощування до забійних кондицій.

The purpose of the work. Despite some progress, the creation of transgenic pigs remains a long and inefficient process. One of the key points in the transfection of porcine generative cells is determining the event of the internalization of foreign DNA by cells. The methods currently used to determine the event of the internalization of foreign DNA by cells do not take into account the possibility of the presence of foreign DNA on the surface of sperm, even after washing from the culture medium. With this in mind, the purpose of this work is to develop a method for confirming the transfection of sperm with plasmid DNA. Materials and methods of research. Sperm were washed four times with GCCS diluent. Sperm transfection was carried out in 0.6 ml polypropylene tubes with a lid in a volume of 50 μl of a suspension of protein-washed sperm in GCCS with a sperm concentration of 100 million/ml. To 50 μl of the suspension of washed sperm from proteins it was added 10 μl of the ring form of plasmid pET-28c (Novagen, France). Sperm were incubated in a thermostat at 37.7°C for two hours. Incubated sperm were stored at -20°C. To isolate DNA, 60 μl of a suspension of washed sperm from proteins with plasmid pET-28c was transferred to 1.5 ml of a polypropylene tube with a lid and centrifuged for 5 min under conditions of 12 thousand vol. min, then 35 μl of supernatant was transferred into a clean 1.5 ml tube leaving at the bottom of approximately 25 μl of liquid with sediment. Isolation of DNA from the supernatant: In a 1.5 ml tube containing 35 μl of supernatant, 2 μl of Proteinase K (20 mg/ml) and 5% aqueous suspension of Chelex-100 were added to a final volume of 100 μl. The contents of the tube were vortexed and incubated in a solid state thermostat for 30 min at +56°C and 8 min at +96°C. The supernatant containing the DNA of plasmid pET-28c was transferred to a clean 0.6 ml tube with a lid and stored at -20°C. Isolation of DNA from the precipitate: To the precipitate it was added 100 μl of TE buffer and 2 μl of Proteinase K (20 mg/ml) and kept for 1.5 h at +56°C. After 5 minutes of centrifugation under conditions of 12 thousand vol. min the supernatant was removed, then to the precipitate was added 100 μl of TE buffer. The procedure of washing with TE buffer was repeated twice. To the purified precipitate it was added 7 μl of dithiothreitol (DTT), 2 μl of Proteinase K (20 mg/ml) and 5% aqueous suspension of Chelex-100 to a final volume of 100 μl. The contents of the tube were vortexed and incubated in a solid-state thermostat for 30 min at +56°C and 8 min at +96°C. The supernatant containing boar sperm DNA was transferred to a clean 0.6 ml tube with a lid and stored at -20°C. The amplification was performed on a programmable thermostat TERTSIK-2 (DNA Technology, Russia). Oligonucleotide primers for the amplification of pET-28c DNA had the following structure: T7 promoter – TAATACGACTCACTATAGGG, T7 terminator – CGCTGAGCAATAACTAGC. This pair of oligonucleotide primers allows to obtain a PCR product with a size of 314 b.p. Tubes with PCR products were stored at -20°C. The specificity of the PCR products was checked by 2% agarose gel electrophoresis in 1 × Tris-borate electrode buffer (TBE) for 2 h at a current of 50 mA in a horizontal electrophoretic chamber (Cleaver Scientific Ltd., UK). DNA of plasmid pUC19 hydrolyzed by Msp I endonuclease was used as a molecular weight marker. After electrophoresis, the gel was stained with ethidium bromide solution (10 mg / cm3), and the results of electrophoresis were photographed using a gel documentation system (Cleaver Scientific Ltd., UK). Research results. The amplification of DNA of plasmid pET-28c, which was isolated using differential lysis, allowed to obtain a PCR product with a size of 314 b.p. The size of the PCR product using oligonucleotide primers (T7promoter/T7terminator) was as expected. Thus, evidence was obtained that plasmid DNA can enter sperm. Conclusions. The time required to isolate DNA using differential lysis depends on the qualifications of the staff and the amount of researches and averages 5–6 hours. This method of DNA isolation does not require the complex equipment and significant costs for reagents, but fertilization of eggs with sperm with a confirmed transfection event will save in the next stages of transfection.